Ca Ski人宫颈癌肠转移细胞

Ca Ski人宫颈癌肠转移细胞是从宫颈癌肠转移临床样本中分离建立的上皮源性恶性肿瘤细胞系，因稳定保留宫颈癌向肠道转移的核心生物学特征、体内外转移潜能明确，成为研究宫颈癌肠转移机制、微环境适配及抗转移药物研发的专属模型，为破解宫颈癌肠转移这一临床难治问题提供了贴近真实病理场景的实验支撑。

从生物学特性来看，该细胞在保留宫颈鳞癌细胞基本属性的基础上，呈现出转移细胞te有的表型：贴壁生长时以梭形为主，细胞极性紊乱，胞质边缘可见明显伪足结构以增强运动能力，胞质丰富呈嗜酸性，部分细胞含肠黏膜适配相关的分泌颗粒；细胞核大而畸形，核仁增多且核质比显著增高，常出现多核及异常核分裂象。其增殖活性较母系宫颈癌细细胞更强，传代周期缩短至1.5-2天，无接触抑制特性，密集生长时易形成侵袭性细胞团。细胞高表达宫颈癌核心标志物CK17、SCC-Ag，同时特异性高表达肠转移相关分子如整合素β4、MMP-7，经检测无微生物污染，遗传背景稳定，在体外可稳定复现宫颈癌肠转移的恶性表型。

该细胞的培养条件需兼顾肿瘤特性与肠转移表型维持，常规采用含12%-15%胎牛血清的RPMI-1640培养基，添加5ng/mL EGF以增强转移相关信号活性，培养环境维持37℃恒温、5%CO₂浓度及95%相对湿度。胎牛血清提供的生长因子与营养成分，支撑细胞高增殖需求；RPMI-1640培养基的缓冲体系适配其代谢特征，EGF可激活细胞迁移相关通路。传代操作时，用无菌PBS清洗2次，加入含0.02%EDTA的0.25%消化液，37℃孵育2-3分钟，待细胞脱壁后用含血清培养基终止消化，吹打为单细胞悬液后按1:5-1:8比例传代，避免过度消化破坏伪足结构影响转移能力评估。

在研究应用领域，该细胞系的价值聚焦于宫颈癌肠转移的核心科学问题。在转移机制研究中，可解析细胞穿透肠黏膜屏障的分子过程，例如MMP-7对肠上皮基底膜的降解作用，整合素β4介导的细胞与肠黏膜基质黏附机制，明确上皮-间质转化（EMT）在转移定植中的调控作用，为挖掘转移特异性靶点提供依据。在微环境适配研究中，通过构建“宫颈癌-肠上皮细胞"共培养模型，模拟肿瘤细胞与肠黏膜微环境的相互作用，揭示肠组织分泌的细胞因子对肿瘤定植的促进机制。

此外，该细胞系是抗宫颈癌肠转移药物筛选的核心工具。体外可通过Transwell迁移实验、肠黏膜模拟屏障穿透实验，检测药物对细胞迁移、侵袭能力的抑制效果；体内可构建裸鼠宫颈癌肠转移模型，评估药物对转移灶形成的阻断作用，为开发针对性抗转移药物提供数据支撑。使用该细胞需注意：一是传代控制在50代以内，每10代通过侵袭实验验证转移能力稳定性；二是培养时避免频繁晃动培养皿，防止细胞伪足结构破坏；三是实验中需设置母系宫颈癌细胞作为对照，明确肠转移亚系的特异性表型。作为专属研究工具，Ca Ski人宫颈癌肠转移细胞为宫颈癌转移精准研究提供了不可替代的实验基础。