CW-2人结肠癌细胞

CW-2人结肠癌细胞是从一名日本男性结肠癌患者的原发性肿瘤组织中分离建立的腺癌细胞系，自20世纪80年代成功建株以来，因高度模拟临床结肠癌的病理特征与生物学行为，成为结直肠癌基础研究与临床转化的核心实验模型。结肠癌作为*高发的消化道恶性肿瘤，具有侵袭性强、易转移、预后差异大的特点，而CW-2细胞的稳定特性为解析其发病机制、筛选治疗药物及评估疗效提供了可靠的实验载体，至今在结直肠癌研究领域应用广泛。

在生物学特性上，CW-2细胞展现出典型的结肠腺癌细胞特征。细胞形态以多边形、柱状为主，呈上皮样排列，胞质丰富，细胞核大而不规则，核仁明显，在体外培养中以贴壁生长为主，生长状态稳定时可形成致密的细胞单层。免疫表型鉴定显示，该细胞高表达结直肠癌相关标志物CEA（癌胚抗原）、CK20（细胞角蛋白20），同时表达上皮细胞黏附分子EpCAM，而不表达正常结肠上皮特异性的分化标志物，明确其恶性上皮细胞属性。遗传学方面，CW-2细胞存在KRAS基因突变、APC基因缺失等结肠癌典型遗传变异，与临床中部分散发性结肠癌的分子特征高度契合。增殖性能上，其倍增周期约为48-60小时，成瘤性强，在裸鼠皮下移植成瘤率可达95%以上，且肿瘤组织病理形态与原发癌相似，模型重复性优异。

标准化的培养与保存流程是维持CW-2细胞活性及特性稳定的关键。体外培养推荐使用DMEM培养基作为基础培养基，添加10%胎牛血清提供营养支持，同时通过严格的无菌操作防控污染，培养环境需严格控制在37℃、5%二氧化碳及饱和湿度的恒温培养箱中。当细胞融合度达到70%-80%时进行传代最佳，传代前先用PBS缓冲液轻柔冲洗细胞2次，加入细胞解离液孵育3-5分钟至细胞边缘收缩，再加入含血清的培养基终止解离，吹打均匀后按1:4比例接种至新培养瓶。冻存时采用含10%DMSO、40%胎牛血清及50%培养基的专用冻存液，将细胞密度调整为1×10^7个/mL，经梯度降温后存入液氮，复苏时快速解冻并离心去除DMSO，可有效保障细胞活力与特性稳定。

CW-2细胞的科研应用价值覆盖结直肠癌研究的多个核心领域。在发病机制研究中，借助其典型的遗传变异特征，可深入探究KRAS/RAF/MEK信号通路异常激活、Wnt/β-catenin通路紊乱等分子事件在肿瘤发生发展中的调控作用，为揭示结肠癌的致病机理提供直接实验依据。在药物研发方面，该细胞系是抗结直肠癌药物筛选的理想模型，可用于评估奥沙li铂、卡培ta滨等临床常用药物的疗效，同时为EGFR抑制剂、KRAS抑制剂等新型靶向药物的活性验证提供支撑，部分药物已通过该模型证实对突变型结肠癌的抑制效果。此外，其高成瘤性的特点使其成为肿瘤侵袭转移机制研究、肿瘤微环境调控分析的重要工具，在免疫检查点抑制剂、溶瘤病毒等免疫疗法的临床前评估中也发挥着关键作用。同时，CW-2细胞在hua疗耐药机制、放疗敏感性研究等方面也具有独特优势，是结直肠癌研究领域不ke或缺的重要实验材料。