小鼠骨髓瘤细胞源自小鼠骨髓浆细胞恶性病变，具无限增殖特性，可分泌单克隆抗体，是制备杂交瘤细胞、研究浆细胞恶性转化及抗肿瘤药物筛选的重要实验模型。

小鼠骨髓瘤细胞

小鼠骨髓瘤细胞是研究浆细胞恶性转化、单克隆抗体制备及抗肿瘤药物研发的关键实验模型，源自小鼠骨髓浆细胞的恶性病变，因保留浆细胞的部分功能特征（如抗体分泌能力）且具备无限增殖的恶性属性，成为免疫学、肿瘤学及药理学领域的重要工具，为解析骨髓瘤发病机制与开发治疗策略提供核心支撑。

从细胞来源与生物学特征来看，其主要有两种获取途径：一是从自发性骨髓瘤小鼠模型（如老年小鼠或特定遗传背景小鼠）的骨髓或外周血中分离纯化，这类细胞携带自然发生的基因突变，能模拟人类多发性骨髓瘤的病理进程；二是通过体外诱导构建 —— 利用病毒转化（如小鼠白血病病毒）或化学致癌物处理正常小鼠浆细胞，促使其发生恶性转化，形成可稳定传代的细胞系。在生物学特征上，这类细胞具有鲜明的 “恶性浆细胞表型"：一方面，其失去正常浆细胞的生长调控机制，可在体外无限增殖，且增殖速率稳定，通常 36-48 小时可完成一次分裂周期；另一方面，多数细胞仍保留浆细胞的抗体分泌功能，能持续合成并分泌单克隆抗体（如 IgG、IgM 亚型），这些抗体可通过 ELISA、Western Blot 等技术检测，不仅可用于细胞鉴定，还能作为特异性探针应用于免疫检测实验。此外，细胞表面表达浆细胞相关标志物（如 CD138、CD38），同时可能伴随染色体异常（如染色体易位），这些特征与人类骨髓瘤细胞高度相似，为疾病模型构建提供了生物学基础。

在细胞形态与增殖特性方面，其形态具有典型的恶性肿瘤细胞与浆细胞的混合特征。在显微镜下，细胞多呈圆形或椭圆形，胞体较大（直径约 10-15μm），胞质丰富且呈嗜碱性（HE 染色中呈深蓝色），部分细胞胞质内可见大小不一的空泡（为抗体合成与分泌相关的细胞器）；细胞核多为圆形或不规则形，核仁明显（1-2 个），核染色质呈粗颗粒状，分布不均。培养过程中，细胞以悬浮生长为主，少数细胞可轻微贴壁或形成松散的细胞团簇，不依赖体外基质即可快速增殖。此外，其具有 “锚定非依赖性生长" 特性，可在软琼脂培养基中形成克隆集落，这一特性是判断细胞恶性程度的重要指标，也可用于评估药物对细胞增殖的抑制效果 —— 药物处理后，克隆集落数量减少或体积缩小，表明药物具有抗骨髓瘤活性。

体外培养条件方面，其培养体系需满足快速增殖与功能维持的双重需求。基础培养基常用 RPMI-1640，添加 10%-20% 胎牛血清以提供充足的营养物质（如氨基酸、生长因子），部分细胞系（如 SP2/0 细胞）需补充谷an酰胺（2mmol/L）以维持细胞代谢活性，避免因谷an酰胺缺乏导致细胞凋亡。培养环境需严格控制：温度维持在 37℃恒温，CO₂浓度为 5%，以调节培养基 pH 值稳定在 7.2-7.4 之间，这一 pH 范围是细胞酶活性与代谢效率的优良区间。由于细胞增殖速率快，需定期监测细胞密度，当密度达到 2×10⁶-6×10⁶个 /mL 时及时传代，传代时按 1:4-1:6 的比例将细胞接种至新鲜培养基中，避免密度过高导致营养耗尽或代谢废物（如乳酸）积累，影响细胞活性。同时，培养过程中需严格无菌操作，因细胞对污染（尤其是细菌、支原体污染）的抵抗力较弱，污染后易快速出现形态异常与增殖停滞。

在科研应用价值上，其是多领域研究的 “多功能工具"。在单克隆抗体制备领域，其是杂交瘤技术的核心融合伴侣 —— 将免疫小鼠的 B 淋巴细胞与骨髓瘤细胞（如 SP2/0、NS-1 细胞）通过聚乙二醇（PEG）或电融合技术融合，形成杂交瘤细胞，这类细胞既保留 B 淋巴细胞的特异性抗体分泌能力，又具备骨髓瘤细胞的无限增殖特性，可稳定分泌针对特定抗原的单克隆抗体，广泛应用于疾病诊断、免疫检测及靶向治疗。在骨髓瘤发病机制研究中，可用于探究致癌基因（如 MYC、RAS）或抑癌基因（如 p53）突变对浆细胞恶性转化的影响，通过基因编辑技术改造细胞，观察细胞增殖、凋亡及侵袭能力的变化，解析基因突变驱动骨髓瘤发生的分子通路；同时可模拟肿瘤微环境（如添加骨髓基质细胞分泌的细胞因子 IL-6、VEGF），研究微环境对骨髓瘤细胞存活与耐药的调控作用。在抗肿瘤药物研发方面，可作为药物筛选模型 —— 将候选hua疗药物、靶向药物（如蛋白酶体抑制剂、免疫检查点抑制剂）加入培养体系，通过 MTT 法、CCK-8 法检测细胞存活率，或通过流式细胞术检测细胞凋亡率，评估药物的抗骨髓瘤活性；同时可构建耐药细胞系，研究耐药机制，为开发逆转耐药的联合治疗方案提供实验依据。此外，还可用于体内移植模型构建 —— 将细胞接种至免疫缺陷小鼠（如裸鼠、NOD/SCID 小鼠）的骨髓或腹腔内，构建骨髓瘤异种移植模型，模拟人类骨髓瘤的体内生长、骨损伤及转移过程，用于评估药物在体内的治疗效果，为临床转化研究奠定基础。