小鼠淋巴瘤细胞源自小鼠淋巴组织恶性病变，具无限增殖特性，保留淋巴瘤细胞免疫表型，是研究淋巴瘤发病机制、药物敏感性及免yi治疗效果的重要实验模型。

小鼠淋巴瘤细胞

小鼠淋巴瘤细胞是研究淋巴瘤发病机制、药物研发及免yi治疗的核心实验模型，源自小鼠淋巴组织（如脾脏、淋巴结、胸腺）的恶性转化细胞，因保留淋巴瘤细胞的典型生物学特征（如异常增殖、免疫表型改变、浸润性生长能力），且可通过基因编辑或诱导构建多种亚型模型，成为血液系统肿瘤研究领域的重要工具，为解析淋巴瘤病理机制与开发治疗策略提供关键支撑。

从细胞来源与生物学特征来看，其主要有两种获取途径：一是从自发性淋巴瘤小鼠模型（如免疫缺陷小鼠、特定基因敲除小鼠）的病变淋巴组织中分离纯化，这类细胞携带自然发生的基因突变，能模拟人类淋巴瘤的自然发病过程；二是通过体外诱导构建 —— 利用化学致癌物（如甲基胆蒽）、病毒（如小鼠白血病病毒）或基因转染技术，将正常小鼠淋巴细胞诱导为恶性转化细胞，可定向构建特定亚型的淋巴瘤细胞模型（如 B 细胞淋巴瘤、T 细胞淋巴瘤）。在生物学特征上，这类细胞具有鲜明的 “恶性表型"：一方面，其失去正常细胞的生长调控机制，可在体外无限增殖，且增殖速率快，通常 24-48 小时即可完成一次分裂；另一方面，其保留对应淋巴瘤亚型的免疫表型，如 B 细胞淋巴瘤细胞表达 CD19、CD20 等 B 细胞标志物，T 细胞淋巴瘤细胞表达 CD3、CD4/CD8 等 T 细胞标志物，这些表型特征可通过流式细胞术检测，用于细胞亚型鉴定与研究。

在细胞形态与增殖特性方面，其形态因亚型不同存在差异，但整体具有恶性肿瘤细胞的共性特征。B 细胞淋巴瘤细胞多呈圆形或椭圆形，胞体较大，胞质丰富且可能含嗜碱性颗粒，细胞核呈圆形或不规则形，核仁明显；T 细胞淋巴瘤细胞则可能呈多形性，部分细胞呈梭形或不规则形，核染色质致密，核仁不清晰。培养过程中，多数淋巴瘤细胞以悬浮生长为主，少数亚型（如间变性大细胞淋巴瘤细胞）可贴壁生长或半贴壁生长；悬浮生长的细胞通常呈单个分散或小团簇分布，不依赖贴壁基质即可增殖。此外，其增殖具有 “anchorage-independent growth" 特性，可在软琼脂培养基中形成克隆集落，这一特性是判断细胞恶性程度的重要指标，也可用于药物对细胞增殖抑制效果的评估。

体外培养条件方面，其培养体系需满足快速增殖与恶性表型维持的需求。基础培养基常用 RPMI-1640，添加 10%-20% 胎牛血清以提供充足的营养物质（如蛋白质、生长因子），部分亚型细胞需补充特定细胞因子（如 IL-2、IL-6）以维持增殖活性与免疫表型。培养环境需维持 37℃恒温、5% CO₂的气体平衡，CO₂浓度可调节培养基 pH 值，使其稳定在 7.2-7.4 之间，这一 pH 范围是细胞代谢与增殖的最佳条件。由于细胞增殖速率快，需定期观察细胞密度，当密度达到 1×10⁶-5×10⁶个 /mL 时及时传代，传代时按 1:3-1:5 的比例将细胞接种至新鲜培养基中，避免密度过高导致营养耗尽或代谢废物积累，影响细胞活性。同时，培养过程中需严格无菌操作，防止细菌、真菌污染，因这类细胞对污染的抵抗力较弱，污染后易快速死亡。

在科研应用价值上，其是淋巴瘤研究领域的 “多功能工具"。在发病机制研究中，可用于探究淋巴瘤相关基因突变（如 MYC、BCL-2 基因突变）对细胞恶性转化的影响，通过基因编辑技术敲除或过表达特定基因，观察细胞增殖、凋亡及侵袭能力的变化，解析基因突变驱动淋巴瘤发生的分子通路；在药物研发方面，可作为药物筛选模型 —— 将候选hua疗药物、靶向药物加入培养体系，通过 MTT 法、CCK-8 法检测细胞存活率，或通过流式细胞术检测细胞凋亡率，评估药物的抗淋巴瘤活性，同时可研究药物耐药机制，为开发逆转耐药的联合治疗方案提供依据；在免yi治疗研究领域，可用于 CAR-T 细胞治疗、免疫检查点抑制剂（如 PD-1/PD-L1 抑制剂）的效果评估，将淋巴瘤细胞与免疫细胞（如 CAR-T 细胞、T 细胞）共培养，检测免疫细胞对淋巴瘤细胞的杀伤效率，为免yi治疗方案的优化提供实验数据；此外，还可用于体内移植模型构建 —— 将细胞接种至免疫缺陷小鼠（如裸鼠、NOD/SCID 小鼠）体内，构建淋巴瘤异种移植模型，模拟人类淋巴瘤的体内生长与转移过程，用于评估药物在体内的治疗效果，为临床转化研究奠定基础。