Jurkat,人T淋巴细胞白血病细胞源自儿童 T-ALL 患者外周血，悬浮生长，具 T 细胞表型与 TCR 信号活性，易操作，是 T 细胞功能、白血病机制及免疫研究的核心模型。

Jurkat,人T淋巴细胞白血病细胞

Jurkat,人T淋巴细胞白血病细胞是 1976 年从一名 14 岁急性 T 淋巴细胞白血病（T-ALL）男性患者外周血中分离建立的永生性细胞系，核心特征为保留成熟 T 淋巴细胞的核心表型、功能性 T 细胞受体（TCR）信号通路及白血病细胞的恶性增殖特性，可在体外高度模拟 T-ALL 的病理生理过程与 T 细胞活化调控机制，是血液肿瘤学、免疫学及细胞生物学领域研究 T 细胞功能、T-ALL 致病机制及相关治疗靶点的 “标gan性基础模型"，其应用贯穿基础研究到临床转化的多个关键环节。

从细胞来源与形态功能特征来看，Jurkat 细胞的建立为 T 细胞相关研究提供了标准化工具 —— 科研人员通过密度梯度离心法分离患者外周血单个核细胞，利用 T 细胞特异性标志物 CD3 筛选纯化，在含胎牛血清的培养基中连续培养传代，最终获得能稳定增殖的细胞群体。该细胞呈现典型的 T 淋巴细胞形态：显微镜下以圆形或椭圆形悬浮生长，偶见短梭形细胞（活化状态特征），胞体直径约 10-15μm，胞质透明稀薄（瑞氏染色呈淡蓝色），仅含少量嗜天青颗粒；细胞核大而圆，占细胞体积的 2/3 以上，染色质呈粗网状分布，核仁清晰可见（1-2 个），部分细胞因核染色质凝聚呈现轻度核异型性（符合白血病细胞特征）。

免疫表型上，Jurkat 细胞以 CD4⁺CD8⁻单阳性表型为主（CD3 阳性率 95% 以上、CD4 阳性率 90% 以上、CD8 阳性率＜10%），同时表达 T 细胞活化相关分子 CD25（阳性率 30%-40%）、CD69（阳性率 20%-25%），低表达 T 细胞幼稚标志物 CD45RA（阳性率 15%-20%），与临床 T-ALL 患者中常见的 “成熟型 T 细胞白血病" 表型高度吻合。功能层面，其最核心的特性是保留完整的 TCR 信号通路活性 —— 通过抗 CD3 抗体（模拟 TCR 配体结合）或佛波酯联合离子霉素（直接激活下游信号）刺激，可激活 Lck、ZAP-70、PLC-γ1 等关键信号分子，最终诱导 IL-2（分泌量可达 500-800pg/mL）、IFN-γ 等细胞因子分泌，这一特性使其成为研究 T 细胞活化机制的理想模型。

在核心生物学特性方面，Jurkat 细胞凭借 “表型稳定、信号可控、易操作性强" 的优势，成为基础研究的核心工具。其一，稳定的遗传学与功能特征：该细胞长期传代（超过 100 代）后仍保持 T 细胞表型与 TCR 信号活性，核型分析显示其为近二倍体（染色体数目 45-47 条），携带 T-ALL 相关的染色体异常（如 14q11.2 区域重排），但无复杂核型改变，遗传背景相对纯净，确保实验结果的可重复性。其二，恶性增殖与凋亡抵抗特性：Jurkat 细胞体外增殖能力强，倍增时间约 24-30 小时，可在普通培养条件下连续培养数月；因携带 Fas 基因部分突变，其对 Fas 介导的凋亡信号敏感性显著下降（抗 Fas 抗体处理后凋亡率仅 15%-20%，正常 T 细胞可达 60% 以上），同时抗凋亡蛋白 Bcl-2 表达升高（是正常 T 细胞的 2-3 倍），这一特征与临床 T-ALL 细胞的 “凋亡抵抗" 表型高度一致，为研究白血病细胞存活机制提供了理想模型。

其三，高转染与基因编辑适配性：Jurkat 细胞细胞膜通透性较高，对脂质体转染、电穿孔等常用转染方法耐受性好，质粒转染效率可达 40%-50%，慢病毒感染效率可达 60% 以上；同时，其适配 CRISPR-Cas9 基因编辑技术，基因敲除 / 敲入效率稳定（敲除效率可达 80% 以上），可快速构建特定基因修饰的细胞模型（如 ZAP-70 敲除细胞、STAT3 过表达细胞），为基因功能研究提供便利。

在体外培养与维护细节上，Jurkat 细胞培养条件简单且易掌握：推荐使用 RPMI 1640 培养基（含 25mmol/L HEPES 缓冲液），添加 10% 热灭活胎牛血清（避免补体激活损伤细胞）与 1% 抗菌试剂，培养环境为 37℃、5% CO₂的恒温培养箱；细胞接种密度需控制在 2×10⁵-5×10⁵ cells/mL（过低易导致细胞凋亡，过高则出现营养耗尽），传代间隔 1-2 天（因增殖速率快，需及时分瓶）；冻存时需选用对数生长期细胞，采用含 10% DMSO+20% 胎牛血清的冻存液梯度降温，复苏后存活率可达 90% 以上，复苏后培养 1 代即可恢复正常活性。

在科研与应用领域，Jurkat 细胞的应用覆盖多个关键方向。其一，T-ALL 致病机制研究：该细胞是解析 T-ALL 分子机制的基础模型 —— 研究发现，Jurkat 细胞中 NOTCH1 信号通路持续激活（NOTCH1 胞内域表达量是正常 T 细胞的 5-6 倍），通过调控 MYC、HEY1 等靶基因促进细胞增殖；抑制 NOTCH1 活性后，细胞增殖抑制率达 75% 以上，凋亡率显著升高，这一发现为临床 T-ALL 的 NOTCH1 靶向治疗提供了实验依据。此外，通过该细胞还鉴定出 TP53、PTEN 等抑癌基因在 T-ALL 中的突变模式，揭示了白血病细胞的遗传致病机制。

其二，T 细胞免疫功能与信号通路研究：Jurkat 细胞是研究 T 细胞活化信号网络的 “黄金标准"—— 通过构建信号分子突变体（如 Lck 激酶失活突变细胞），明确了 Lck 在 TCR 信号起始中的关键作用（突变后 IL-2 分泌下降 90%）；在免疫检查点机制研究中，利用该细胞发现 PD-1/PD-L1 结合可抑制 TCR 下游信号分子磷酸化（ZAP-70 磷酸化水平下降 40%），为 PD-1 抗体的免疫激活作用提供了机制解释；同时，其还被广泛用于 T 细胞代谢研究，如检测活化状态下糖酵解速率升高（2-3 倍）、线粒体呼吸功能变化等，揭示 T 细胞功能与代谢重编程的关联。

其三，CAR-T 细胞相关与药物筛选研究：在 CAR-T 细胞相关研究中，Jurkat 细胞常被改造为表达 CD19、CD22 等靶点的 “靶细胞"，用于检测 CAR-T 细胞的杀伤效率（改造后细胞被特异性 CAR-T 细胞杀伤率可达 85% 以上）；在 T-ALL 靶向药物筛选中，通过该细胞筛选出针对 NOTCH1、JAK-STAT 等通路的小分子抑制剂，如某 NOTCH1 抑制剂处理后，细胞增殖抑制率达 80% 以上，且对正常 T 细胞毒性低；此外，其还可用于相关抑制剂效果评估，为治疗方案优化提供数据。

其四，教学与诊断技术开发：因培养简便、表型典型，Jurkat 细胞常被用于医学教学中的 “T 细胞形态观察"“细胞活化实验" 等课程，帮助学生理解 T 细胞生物学特性；在诊断技术开发中，其可作为流式细胞术检测 T 细胞标志物的阳性对照（如 CD3、CD4 抗体验证），确保检测结果的准确性；同时，基于该细胞构建的荧光报告系统（如 NF-κB 荧光素酶报告细胞），可快速检测药物对 T 细胞信号通路的影响，为临床药物敏感性评估提供技术支持。

需特别注意的是，Jurkat 细胞与此前提及的 Jurkat77 亚系存在明确差异：Jurkat 为原始基础细胞系，侧重 T-ALL 基础机制与 T 细胞功能研究；而 Jurkat77 是经克隆筛选的亚系，更贴近 T 淋巴瘤病理表型（如高表达 PD-L1、STAT3 突变），适用于淋巴瘤亚型研究。二者定位互补，共同覆盖 T 细胞恶性肿瘤研究的不同方向。

综上，Jurkat 人 T 淋巴细胞白血病细胞作为建立最早、应用zui广泛的 T 细胞白血病细胞系，凭借 “标准化、易操作、功能完整" 的特性，成为连接基础研究与临床转化的关键桥梁。其在 T-ALL 机制、T 细胞功能、相关治疗研发等领域的应用，不仅推动了血液肿瘤学与免疫学的理论进展，更为临床诊疗技术创新提供了重要实验依据，至今仍是相关研究领域不ke或缺的核心工具。