UMR-106大鼠骨肉瘤细胞源自大鼠骨肉瘤组织，呈成纤维样贴壁生长，具成骨活性与侵袭性，是研究骨肉瘤发病机制、骨代谢及抗肿瘤药物筛选的重要模型。

UMR-106大鼠骨肉瘤细胞

UMR-106大鼠骨肉瘤细胞是研究骨肿瘤生物学、骨代谢调控及抗骨肉瘤药物研发的经典体外模型，源自大鼠股骨骨肉瘤组织，经体外分离培养与鉴定后，保留了骨肉瘤细胞的核心恶性特征，同时具备明确的成骨活性 —— 可合成与分泌骨基质相关蛋白，为骨肉瘤发病机制解析、骨代谢信号通路研究及抗肿瘤药物筛选提供了可靠实验材料，在骨科学基础研究与临床转化领域应用广泛且科研价值突出。

从细胞来源与生物学特性来看，该细胞系于 1966 年从一位雄性 Wistar 大鼠的原发性股骨骨肉瘤中分离建立，属于高度恶性的骨源性肿瘤细胞系，病理类型贴近临床成骨性骨肉瘤。在形态上，UMR-106 大鼠骨肉瘤细胞呈典型的成纤维样或多边形混合形态，胞体大小不均（长径约 15-30μm），部分细胞呈长梭形放射状排列，部分呈多边形聚集生长，细胞核大而不规则，核仁明显（1-3 个），染色质呈粗颗粒状分布，细胞质丰富且含少量嗜碱性颗粒（与骨基质合成相关），体外贴壁培养时易形成多层生长（无明显接触抑制），这一形态与临床骨肉瘤组织中肿瘤细胞的异质性特征高度吻合，便于通过光学显微镜观察判断细胞生长状态与恶性程度。在分子特征与功能方面，UMR-106 细胞表达骨肉瘤与成骨细胞特异性标志物：如骨桥蛋白（OPN，骨基质关键蛋白）、骨钙素（OCN，成骨细胞分化标志物）、碱性磷酸酶（ALP，成骨活性关键酶），以及骨肉瘤恶性相关标志物（如基质金属蛋白酶 MMP-9、MMP-2，参与肿瘤侵袭）；其核心特性是兼具成骨活性与恶性侵袭性—— 一方面可通过合成胶原蛋白 I、OPN 等骨基质成分模拟成骨过程，ALP 活性稳定且可被骨形态发生蛋白（BMP）等因子上调；另一方面具有强增殖能力（倍增时间约 24-36 小时）与体外侵袭能力（Transwell 实验中可高效穿透基质胶），同时可在裸鼠体内形成移植瘤，模拟骨肉瘤的体内生长与转移过程。

在培养条件与操作要点方面，UMR-106 大鼠骨肉瘤细胞对培养环境适应性较强，但需注意维持其成骨活性与恶性特征。培养基推荐使用含 10%-15% 胎牛血清（FBS，需选择无支原体、低内毒素的优质血清）的 DMEM 高糖培养基（或 MEM 培养基），若需诱导成骨分化，可在培养基中添加 50-100μg/mL 抗坏血酸、10mmol/L β- 甘油lin酸钠（促进骨基质沉积与 ALP 活性上调）；培养环境需严格控制在 37℃、5% CO₂的恒温培养箱中，CO₂浓度可稳定培养基 pH 值在 7.2-7.4 的适宜范围，同时需保证培养箱内相对湿度≥95%（避免培养基蒸发导致渗透压改变）。传代操作时，需密切观察细胞融合度，当细胞融合度达到 80%-90% 时进行传代（过度融合易导致细胞分化或侵袭能力下降），传代前先用磷酸盐缓冲液（PBS）清洗细胞 2-3 次，去除残留培养基与代谢废物，加入 0.25% 胰dan白酶 - EDTA 消化液，37℃孵育 3-5 分钟（成纤维样细胞贴壁较牢固，消化时间需充分），待细胞间隙明显增大、梭形细胞收缩变圆时，立即加入含血清的培养基终止消化，轻轻吹打细胞使其分散成单细胞悬液（避免过度吹打导致细胞破碎），按 1:3-1:5 的比例接种至新培养瓶中。培养过程中需每 2-3 天更换一次培养基，及时清除代谢废物（如乳酸、氨）；同时需严格遵守无菌操作规范，所有试剂使用前经 0.22μm 滤膜过滤除菌，每 1-2 周通过 PCR 法检测细胞是否存在支原体污染（支原体污染会干扰 ALP 活性与侵袭能力检测），确保细胞培养稳定性。在细胞冻存与复苏方面，冻存液建议使用含 10% 二甲基亚砜（DMSO）、20% 胎牛血清的 DMEM 高糖培养基，将细胞浓度调整为 1×10⁶-2×10⁶个 /mL，按梯度降温法处理：4℃放置 30 分钟→-20℃放置 1 小时→-80℃过夜→次日转入液氮长期保存；复苏时需将冻存管迅速放入 37℃水浴锅，持续轻轻摇晃至细胞悬液wan全融化（约 1-2 分钟），立即加入 10 倍体积的新鲜培养基稀释 DMSO，1000rpm 离心 5 分钟后弃上清，用培养基重悬细胞接种，复苏后 24 小时观察细胞贴壁率（通常要求≥80%），并通过 ALP 活性检测验证成骨功能，确保细胞功能正常。

在功能特点与科研应用领域，UMR-106 大鼠骨肉瘤细胞凭借其成骨活性与恶性特征的双重优势，被广泛应用于骨肉瘤机制研究、骨代谢调控探索及抗骨肉瘤药物筛选等方面。在骨肉瘤机制研究中，该细胞是解析骨肉瘤恶性进展的核心工具 —— 研究人员可通过检测细胞中异常信号通路（如 Wnt/β-catenin、PI3K-AKT 通路）的激活状态，分析基因突变（如 p53、Rb 突变）对细胞增殖、侵袭的影响，明确骨肉瘤恶性转化的分子机制；同时，利用其体外侵袭模型，可研究 MMPs、OPN 等分子在肿瘤侵袭中的作用，为靶向抑制骨肉瘤转移提供理论依据。

在骨代谢调控研究中，UMR-106 细胞可用于验证骨相关因子的功能 —— 如添加 BMP-2、甲状旁腺激素（PTH）等因子，观察细胞 ALP 活性、OCN 分泌量及骨基质合成的变化，明确因子对成骨过程的调控作用；此外，可构建骨吸收 - 成骨偶联模型（与破骨细胞共培养），研究骨肉瘤微环境中骨代谢失衡的机制，为骨转移瘤相关骨病的治疗提供靶点。

在药物筛选方面，UMR-106 细胞是抗骨肉瘤药物体外评价的常用模型：针对hua疗药物（如shun铂、阿mei素），可通过 MTT 法、克隆形成实验检测药物对细胞增殖的抑制率（计算 IC50 值），通过流式细胞术检测药物诱导的凋亡率，评估药物细胞毒性；针对靶向药物（如 MMP 抑制剂、PI3K 抑制剂），可通过 Transwell 实验检测药物对细胞侵袭的抑制效果，通过 Western blot 检测药物对靶蛋白表达的影响，验证药物靶向活性；同时，可用于筛选促进骨修复的药物（如植物提取物、骨代谢调节剂），通过检测 ALP 活性、骨基质合成量，评估药物对成骨功能的促进作用。

在动物模型构建方面，UMR-106 细胞可用于建立骨肉瘤体内移植模型 —— 将细胞接种至裸鼠胫骨或股骨骨髓腔（模拟原位骨肉瘤），或通过尾静脉注射构建肺转移模型，观察肿瘤的体内生长、骨破坏及转移情况，用于评估药物的体内抗骨肉瘤效果与安全性，为临床前药物研发提供关键数据。

综上所述，UMR-106 大鼠骨肉瘤细胞凭借其稳定的成骨活性、明确的恶性特征及科研适用性，成为骨科学研究领域的核心工具，为推动骨肉瘤机制解析、骨代谢调控探索及抗骨肉瘤药物研发发挥关键作用，尤其在骨肉瘤与骨代谢交叉领域的研究中具有不可替代的价值，未来在精准骨肿liu治疗与骨修复研究中仍将保持广泛应用。