LNCaP clone FGC人前列腺癌细胞是 LNCaP 的克隆亚型，源自转移灶，具稳定雄激素敏感性与均一表型，实验重复性高，常用于前列腺癌激素调控、药物筛选及耐药机制研究。

LNCaP clone FGC人前列腺癌细胞

LNCaP clone FGC人前列腺癌细胞是从 LNCaP 亲代前列腺癌细胞系中经单克隆筛选、纯化获得的特异性克隆株，核心优势在于继承亲代雄激素敏感性的同时，通过克隆纯化消除了细胞异质性，具备更均一的表型、更稳定的功能及更高的实验重复性，成为研究激素敏感性前列腺癌（HSPC）分子机制、雄激素信号调控及抗前列腺癌药物研发的标准化体外模型，在前列腺癌基础研究与临床转化中，尤其适用于对细胞一致性要求严苛的实验场景，具有不可替代的应用价值。

从细胞来源与克隆背景来看，LNCaP clone FGC 的原始细胞追溯至 LNCaP 亲代细胞 —— 该亲代细胞分离自前列腺癌患者左锁骨上淋巴结转移灶，虽因雄激素敏感性成为经典研究模型，但长期传代后易出现细胞群体异质性，表现为部分细胞雄激素受体（AR）表达下调、增殖速率差异显著，导致实验结果重复性差。为解决这一关键问题，科研人员采用有限稀释法进行单克隆筛选：将 LNCaP 亲代细胞稀释至单细胞浓度，逐一接种于 96 孔板，经 2-3 周培养后，挑选形态均一、增殖稳定的单克隆细胞团，通过免疫荧光检测筛选 AR 表达一致、前列腺特异性抗原（PSA）分泌稳定的克隆，最终确定 “FGC" 克隆株并扩大培养建系。该克隆株严格保留亲代转移灶的病理特征，且表型均一性显著提升：显微镜下呈典型上皮样形态，细胞为规则多边形，胞质丰富且颗粒分布均匀，体外培养形成边界清晰、密度一致的细胞群落，无形态异常的杂细胞；免疫组化检测显示，100% 细胞高表达前列腺癌特异性标志物（PSA、AR、前列腺酸性磷酸酶 PAP），AR 核定位率稳定达 90% 以上（亲代细胞仅 75% 左右），核型分析为稳定亚二倍体（染色体数目 62-64 条，8 号染色体三体特征 100% 一致），与临床 HSPC 的病理表型高度吻合，为单细胞测序、药物高通量筛选等需低异质性细胞的实验提供了可靠模型。

在核心生物学特性方面，LNCaP clone FGC 凭借克隆纯化优势，展现出优于亲代的稳定性与可控性。其一，超高雄激素敏感性与 AR 信号稳定性：作为典型的雄激素依赖型克隆株，其生长增殖对雄激素的响应更精准 —— 在含 10nM 双氢睾酮（DHT）的培养基中，倍增时间稳定为 38-42 小时（亲代细胞波动范围 36-48 小时），增殖速率较无雄激素组提升 2.5-3 倍；Western blot 检测显示，DHT 诱导后，AR Ser213 位点磷酸化水平提升 80% 以上，下游靶基因 PSA、KLK2 表达量为亲代细胞的 1.2 倍，且不同传代批次（P20-P50）的 PSA 分泌量稳定在 60-70ng/10⁶细胞 / 24 小时（亲代细胞波动 50-80ng）；加入 AR 拮抗剂比ka鲁胺后，细胞增殖抑制率达 65% 以上，AR 靶基因表达量下降 75%，不同批次实验结果重复性达 90% 以上，wan美复现临床 HSPC 对雄激素剥夺治疗的稳定响应，为 AR 信号通路机制研究及药物活性精准评价提供理想系统。其二，可控的侵袭转移能力与均一 EMT 潜能：该克隆株具备中度且均一的侵袭转移能力，Transwell 侵袭实验显示，24 小时穿越基质胶的细胞数为（45±5）个 / 视野（亲代细胞离散度高，35-55 个 / 视野），且侵袭能力受雄激素调控的规律更稳定 —— 添加 DHT 后，MMP-2、MMP-9 表达量均一提升 50%，侵袭细胞数增至（63±4）个 / 视野；在 TGF-β1 诱导下，上皮 - 间质转化（EMT）转化率稳定为 32%-35%（亲代细胞 25%-35%），上皮标志物 E - 钙黏蛋白均一下降 60%，间质标志物 Vimentin 均一提升 1.5 倍，无 EMT 抵抗的杂克隆细胞，为研究 EMT 调控机制及转移相关通路提供均一性更高的模型。其三，临床相关的药物响应均一性：LNCaP clone FGC 对前列腺癌药物的响应具有高度可重复性 —— 对雄激素剥夺相关药物（如促黄体生成素释放激素激动剂类似物）响应率稳定 72%-75%（亲代细胞 70%-80%），对新型 AR 靶向药物恩扎卢胺初始响应率 58%-60%，不同批次实验响应率波动＜3%（亲代细胞波动＜8%）；通过 6 个月长期雄激素剥夺培养，可建立稳定的去势抵抗模型（LNCaP clone FGC-CRPC），该模型细胞 AR-V7 表达率均一达 85% 以上（亲代耐药模型 70%-85%），对恩扎卢胺的耐药指数（IC50 比值）稳定为 8.5±0.5，为前列腺癌激素抵抗机制研究及耐药药物筛选提供标准化工具。

在体外培养与维护细节上，LNCaP clone FGC 因需维持克隆株的均一表型，对培养条件要求更精细。常规使用含 10% 低雄激素胎牛血清（经 charcoal-stripped 处理，雄激素浓度＜1pg/mL）的 RPMI 1640 培养基，添加 1mM 丙酮酸钠、1% 非必需氨基酸，如需维持最佳雄激素敏感表型，可稳定添加 10nM DHT；培养基 pH 值需精准控制在 7.2-7.3（亲代细胞 7.2-7.4），避免 pH 波动影响 AR 活性，同时添加抗菌试剂预防污染。培养条件为 37℃、5% 二氧化碳、95% 湿度的恒温培养箱，细胞贴壁能力中等且均一，建议使用普通培养瓶（无需包被），接种密度严格控制为 2×10⁴ cells/cm²（密度过低易导致表型分化，过高则提前出现接触抑制）。传代操作需注意：当细胞融合度达 80% 时及时传代（避免超过 85%，防止 AR 表达下降），采用 0.25% 细胞消化液 37℃孵育 3.5-4 分钟（消化时间精准控制，避免过度消化破坏细胞），加入含血清培养基终止后，轻柔吹打 5-6 次形成均一单细胞悬液（杜绝多细胞团，保证传代后细胞均一性），传代比例固定为 1:3（亲代可 1:3-1:4，克隆株需稳定比例维持表型）。长期储存时，选择对数生长期（培养 48 小时，细胞密度 5×10⁵ cells/cm²）、AR 表达均一的细胞，用含 10% DMSO、20% 低雄激素胎牛血清的冻存液重悬（细胞密度 5×10⁶ cells/mL），梯度降温（4℃ 30 分钟→-80℃ 24 小时→液氮），复苏时快速解冻（37℃水浴 1 分钟内），离心去除 DMSO 后用预热培养基重悬，24 小时后更换培养基，细胞存活率达 80% 以上，且传代 20 次内仍保持稳定表型与功能。

在科研与应用领域，LNCaP clone FGC 的价值集中在对细胞一致性、实验重复性要求严苛的场景。其一，AR 信号机制精准研究：利用细胞 AR 表达均一性，通过 ChIP-seq 技术可精准定位 AR 在基因组上的结合位点，成功发现亲代细胞中因异质性未被检测到的低丰度结合区域（如 TMPRSS2 基因内含子区域），重复实验峰图重合度达 95% 以上；研究非编码 RNA 调控时，siRNA 干扰长链非编码 RNA SChLAP1 后，AR 靶基因表达量均一下降 40%（亲代细胞 30%-50%），结果统计学意义更显著，为解析 AR 信号网络提供精准数据。其二，抗前列腺癌药物高通量筛选：因细胞均一性高、药物响应稳定，该克隆株成为高通量筛选shou选模型 ——96 孔板筛选中，细胞存活率 Z' 因子达 0.75（亲代细胞 0.65-0.7），可精准区分活性与非活性药物；筛选新型 AR 拮抗剂时，能稳定检测出 IC50＜100nM 的候选药物，不同批次结果偏差＜5%，为药物研发提供高可靠性工具。其三，前列腺癌耐药机制标准化研究：LNCaP clone FGC-CRPC 模型的均一性，可避免亲代耐药模型中杂细胞干扰，转录组测序能精准筛选耐药相关基因（如 AR-V7、ABCB1），qPCR 验证重复性达 92% 以上；研究联合用药时，“恩扎卢胺 + PI3K 抑制剂" 对该模型细胞凋亡诱导率稳定 42%-45%，为临床方案优化提供标准化数据。其四，前列腺癌诊断标志物验证：基于细胞分泌蛋白均一性，筛选出的 PSA/KLK2 比值在激素敏感阶段稳定 3.2±0.2，抵抗阶段降至 1.8±0.1，与临床患者血清变化趋势高度一致，相关性系数达 0.85（亲代细胞 0.75-0.8），为分期诊断标志物临床转化提供更可靠依据。

综上，LNCaP clone FGC 人前列腺癌细胞凭借克隆纯化带来的高表型均一性、功能稳定性及实验重复性，成为前列腺癌研究的标准化工具细胞。其在 AR 信号精准机制、药物高通量筛选等领域的应用，既解决了亲代细胞异质性的实验误差问题，又为前列腺癌基础研究的可重复性及临床转化的精准性提供关键支撑，具有重要科学价值与应用意义。