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HFSF人胚胎眼巩膜成纤维细胞
产品简介:

HFSF人胚胎眼巩膜成纤维细胞源自人胚胎眼巩膜组织,贴壁生长,参与巩膜基质合成与修复,用于青光眼巩膜重塑、眼轴发育及眼科药物筛选研究。

产品型号:

更新时间:2025-11-12

厂商性质:代理商

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产品介绍

HFSF人胚胎眼巩膜成纤维细胞

一、细胞基本生物学特性

HFSF人胚胎眼巩膜成纤维细胞源自孕中期健康人胎儿眼巩膜组织(侧重巩膜基质层,该区域是巩膜结构支撑与重塑的核心部位),经原代酶解(胶原酶联合消化)、差速贴壁纯化及体外连续传代建株,属单一梭形成纤维细胞系。细胞形态均一,呈典型长梭形或纺锤形,贴壁生长时排列呈平行状或漩涡状,胞体直径 10-16μm,胞质丰富且含大量平行排列的微丝(电镜下可见微丝束,为细胞收缩与胶原合成提供结构基础),细胞核呈椭圆形、位于细胞中央,核仁清晰,染色质呈细网状,正常培养条件下核分裂象偶见(比例约 1%-2%),符合胚胎来源成纤维细胞增殖特性。

该细胞保留眼巩膜成纤维细胞专属功能,增殖周期稳定(传代次数 15-20 代,每代周期约 72-96 小时),核心功能集中在三方面:一是巩膜基质合成功能,可大量分泌 I 型胶原(占分泌胶原总量的 80% 以上)、III 型胶原(约 10%-15%)及蛋白多糖(如硫酸皮肤素、硫酸角质素),其中 I 型胶原分泌量达 15μg/mL/24h(ELISA 检测),构建巩膜组织的结构骨架;同时表达胶原酶(MMP-1)与胶原酶抑制剂(TIMP-1),通过二者平衡调控胶原降解,维持巩膜基质稳态。二是巩膜重塑响应功能,对眼轴发育相关因子呈敏感响应:10ng/mL TGF-β2 处理 24 小时,细胞胶原合成量增加 40%,α- 平滑肌肌动蛋白(α-SMA)表达升高 3 倍(免疫荧光阳性率从基础 5% 升至 18%),模拟近视发生时巩膜重塑过程;10ng/mL FGF2 处理后,细胞增殖率提升 25%,胶原酶活性增强,参与巩膜组织修复。三是眼表微环境调节功能,分泌多种眼表保护因子,如 EGF(促进角膜上皮修复)、TGF-β3(抑制过度纤维化),同时对炎症因子有调控作用:10ng/mL IL-1β 处理 24 小时,IL-6 分泌量达 38pg/mL(空白组 10pg/mL),但添加 10ng/mL TGF-β3 可使 IL-6 分泌降至 16pg/mL,体现炎症平衡调节能力。

分子表型鉴定明确:细胞高表达成纤维细胞特异性标志物 —— 波形蛋白(Vimentin,免疫荧光阳性率≥95%)、成纤维细胞特异性蛋白 1(FSP1,阳性率≥90%);同时表达巩膜成纤维细胞特征分子 ——CD90(细胞膜阳性率≥85%)、I 型胶原 α1 链(COL1A1,胞质阳性率≥90%),其中 Vimentin⁺FSP1⁺双阳性细胞占比≥95%,是细胞身份的核心标志。信号通路方面,TGF-β/Smad 通路(Smad2、Smad3 磷酸化水平高)调控胶原合成与细胞分化,MAPK/ERK 通路(ERK1/2 磷酸化活性强)介导细胞增殖信号,PI3K/Akt 通路(Akt 磷酸化率≥30%)参与细胞存活与功能维持,三者协同保障细胞功能稳定。核型分析显示为 46,XX/XY 正常二倍体,染色体畸变率 < 1%,裸鼠皮下接种 8 周无肿瘤形成,安全性可靠,是研究巩膜发育、近视机制及眼科疾病的理想体外模型。

二、体外培养关键条件

培养需精准控制营养与环境参数,以维持细胞基质合成与重塑功能:

  • 培养基配置:采用 DMEM/F12(1:1)混合培养基,添加 10% 胎牛血清(需筛选批次,确保 TGF-β2 含量≤2pg/mL,避免干扰细胞功能)、1% 非必需氨基酸(NEAA)、50μg/mL 抗坏血酸(促进胶原合成)。培养基 pH 值严格控制在 7.2-7.4(偏离 0.2 会导致胶原合成量下降 30%),渗透压 280-300 mOsm/kg(过高易导致细胞脱水,影响微丝结构)。开展巩膜重塑实验时,需用 5% FBS 培养基饥饿 12 小时,减少血清因子干扰;维持胶原合成功能需添加 10ng/mL 胰岛素,促进蛋白多糖合成。

  • 环境参数:培养箱温度稳定在 37℃±0.5℃(温度波动 ±1℃会使增殖率下降 25%,胶原合成减少 20%),CO₂浓度 5%±0.3%(过低导致 pH 升高,过高抑制抗坏血酸活性),相对湿度≥95%(避免培养基蒸发浓缩,影响因子浓度)。模拟眼内低氧环境(巩膜深层氧浓度 5%-8%)时,需通入氮气调节氧浓度,诱导 HIF-1α 表达(Western blot 检测灰度值升高 1.8 倍),用于研究缺氧对巩膜重塑的影响。

  • 传代操作:细胞融合度达 80%-90% 时传代,操作步骤如下:①无菌 PBS 轻柔清洗 2 次(每次 1 分钟,避免破坏细胞间连接);②加入 0.25% 含 EDTA 的消化液,37℃孵育 4-6 分钟(镜下观察细胞间隙增大、胞体收缩变圆);③加入含血清培养基终止消化,轻柔吹打(吹打次数≤8 次,避免细胞破碎);④1000rpm 离心 5 分钟,弃上清后用新鲜培养基重悬;⑤按 1:3 比例接种至普通培养皿(无需包被,细胞贴壁率≥90%)。传代超过 18 代后,细胞功能开始衰减(胶原合成量降至 10μg/mL 以下),需及时冻存备用。

  • 培养注意事项:细胞对血清批次敏感,不同批次血清可导致胶原分泌量波动 35%,需通过预实验筛选;每 3 天换液 1 次(换液量为培养基总量的全量,因细胞代谢旺盛,旧液中代谢废物易积累);每 5 代检测细胞功能(胶原分泌量≥12μg/mL、α-SMA 基础阳性率≤8%);需加强无菌操作,预防细菌污染(成纤维细胞对细菌毒素敏感,污染后易出现细胞凋亡)。

三、核心科研应用领域

  1. 近视机制与巩膜发育研究:可构建近视相关巩膜重塑模型,如 TGF-β2 诱导模型(10ng/mL 处理 72 小时,胶原合成增加 40%,α-SMA 升高 3 倍),研究关键基因(如 COL1A1、MMP-1、TIMP-1)在巩膜变薄、眼轴增长中的作用;模拟近视环境(低氧 + TGF-β2 联合处理),观察到细胞胶原降解率提升 28%,为解释近视发生时巩膜基质流失提供实验依据;同时可研究眼轴发育关键因子(如 FGF2、IGF-1)对细胞增殖与胶原合成的调控,揭示巩膜发育规律。

  1. 眼科疾病研究与药物筛选:用于青光眼、高度近视等疾病机制研究,如构建青光眼巩膜纤维化模型(添加 10ng/mL TGF-β1,α-SMA 阳性率升至 25%),探索巩膜硬度增加与眼压升高的关联;针对高度近视,筛选抑制巩膜过度重塑的药物,如检测杜仲提取物(100μg/mL)处理后,细胞胶原降解率从 28% 降至 15%,α-SMA 表达恢复至基础水平,验证其对巩膜的保护作用;同时可筛选眼用抗纤维化药物,评估药物对细胞胶原合成与 MMP 活性的影响,为眼科疾病治疗提供候选药物。

  1. 眼用生物材料研发与评价:作为种子细胞用于巩膜修复材料研发,与生物材料(如胶原支架、丝素蛋白膜)复合构建人工巩膜,体外培养 14 天,细胞黏附率≥90%,胶原分泌量达 12μg/mL,且材料可促进细胞定向排列,模拟天然巩膜结构;同时用于眼用材料生物相容性评价,检测材料浸提液对细胞活力(台盼蓝染色活力≥85%)、胶原合成(≥10μg/mL)的影响,确保材料安全性与功能性,推动人工巩膜临床转化。

  1. 眼表损伤修复研究:用于眼表损伤修复机制探索,如构建细胞划伤模型(划伤宽度 200μm),观察到细胞 24 小时迁移距离达 150μm,同时分泌 EGF 促进划伤区域 “上皮化";研究修复因子(如 TGF-β3、EGF)对细胞迁移与胶原合成的协同作用,发现二者联合使用可使划伤愈合时间缩短 30%,为眼表损伤修复治疗提供新策略。

四、质量控制与使用注意事项

(一)质量控制标准

  1. 细胞活力与纯度:台盼蓝染色活力≥90%,传代 24 小时贴壁率≥90%;流式检测 Vimentin⁺细胞≥95%、FSP1⁺细胞≥90%、CD90⁺细胞≥85%,无其他眼周细胞污染(角膜上皮细胞 CK12⁺<3%、视网膜色素上皮细胞 RPE65⁺<3%)。

  1. 功能验证:I 型胶原分泌≥12μg/mL/24h(ELISA 检测);10ng/mL TGF-β2 处理 24 小时,α-SMA 表达升高≥2 倍;细胞划伤模型 24 小时愈合率≥60%(验证迁移修复能力)。

  1. 遗传与安全:核型为 46,XX/XY 正常二倍体,畸变率 < 1%;STR 分型与标准 HFSF 细胞图谱一致性≥95%;裸鼠接种无致瘤性,无 HIV、HBV、HCV 污染。

(二)使用注意事项

  1. 培养管理:每 5 代进行表型与功能验证,避免细胞功能漂移(如出现 FSP1 表达下降、胶原合成减少,需更换血清或调整培养基成分);与其他眼周细胞(如角膜上皮细胞、视网膜细胞)分开培养,使用独立试剂耗材,防止交叉污染;操作时轻柔吹打,保护细胞微丝结构(过度吹打易导致微丝断裂,影响胶原合成)。

  1. 实验设计:设置空白对照、阳性对照(正常巩膜组织匀浆)与溶剂对照,确保实验重复性;开展药物筛选实验时,设置浓度梯度组(如 10μg/mL、50μg/mL、100μg/mL),确定药物有效剂量范围;共培养实验需设置单独材料对照组,明确细胞与材料的相互作用。

  1. 冻存复苏:对数生长期细胞用含 10% DMSO、20% FBS、50μg/mL 抗坏血酸的冻存液,梯度降温冻存(4℃30min→-20℃1h→-80℃过夜→液氮);复苏时 37℃水浴 1 分钟,离心后用含抗坏血酸的培养基重悬,72 小时检测胶原分泌量(需≥10μg/mL),确保功能恢复后再进行实验。

  1. 安全防护:遵守生物安全二级规范,废弃培养物用 0.5% 次氯酸钠处理 30 分钟后灭菌;冻存管标注清晰(细胞名称、冻存日期、操作人员),存放专用液氮罐;实验人员定期体检,避免职业暴露(如皮肤接触细胞悬液后,立即用肥皂水清洗)。


 

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