Caov-3人乳头状卵巢腺癌细胞

Caov-3人乳头状卵巢腺癌细胞是源自人卵巢乳头状腺癌组织的上皮源性恶性肿瘤细胞系，因稳定保留卵巢癌乳头状分化特征、体内外致瘤性明确且对临床治疗研究适配性高，成为卵巢癌发病机制、恶性表型调控及抗卵巢癌药物研发的经典模型，为妇科恶性肿瘤领域研究提供了贴近临床病理特征的实验支撑。

从生物学特性来看，该细胞呈典型的乳头状腺癌细胞形态，贴壁生长且易形成乳头状细胞簇，显微镜下以多边形为主，细胞边界清晰，胞质丰富呈嗜酸性，部分细胞可见分泌型空泡，细胞核大而圆形，核仁明显且核质比高，常出现双核或多核现象，染色质分布不均呈粗颗粒状。其增殖活性稳定，传代周期为2-3天，无接触抑制特性，密集生长时可形成多层细胞结构。细胞高表达卵巢癌相关标志物，如癌抗原125（CA125）、上皮细胞膜抗原（EMA）及细胞角蛋白7（CK7），同时具有较强的侵袭与黏附能力，经检测无支原体、细菌、真菌污染，遗传背景稳定，在体外培养中可稳定维持卵巢乳头状腺癌的核心恶性表型。

该细胞的培养条件需兼顾腺癌细胞特性与分化表型维持，常规采用含10%-15%胎牛血清的DMEM培养基，部分实验可添加1%非必需氨基酸以提升细胞分泌功能，培养环境维持37℃恒温、5%CO₂浓度及95%相对湿度的湿润条件。胎牛血清提供的上皮生长因子（EGF）、胰岛素样生长因子（IGF）等成分，为细胞增殖与乳头状分化提供信号支持；DMEM培养基的高糖配方适配其能量代谢需求，可有效维持细胞活性与分泌功能。传代操作时，用无菌PBS缓冲液轻柔清洗细胞表面2次，加入含0.02%EDTA的0.25%消化液，37℃孵育3-5分钟，待细胞间隙增大后用含血清培养基终止消化，吹打为单细胞悬液后按1:3-1:6比例传代，避免剧烈吹打破坏细胞间连接及乳头状结构。

在研究应用领域，该细胞系的价值聚焦于卵巢癌的核心科学问题。在恶性机制研究中，可用于解析卵巢癌细胞乳头状分化的调控网络，例如分析Wnt/β-catenin、Hippo等信号通路对细胞极性建立、细胞簇形成的调控作用，探究CA125高表达与肿瘤侵袭转移的关联机制，为挖掘卵巢癌特异性诊断靶点提供依据。在耐药机制研究中，通过构建铂类药物耐受模型，分析ABC转运蛋白家族、DNA损伤修复基因的表达变化，明确卵巢癌hua疗耐药的分子基础。

此外，该细胞系是抗卵巢癌药物筛选的核心工具。体外可通过CCK-8法、克隆形成实验检测药物对细胞增殖的抑制效果，利用Transwell实验评估药物对细胞侵袭能力的影响；体内可构建裸鼠卵巢癌移植瘤模型，观察药物对肿瘤生长及腹腔转移的干预作用，为临床用药方案优化提供数据支撑。使用该细胞需注意：一是传代控制在50代以内，每10代通过免疫荧光验证CA125表达及乳头状表型稳定性；二是培养时避免频繁更换培养基，防止细胞分泌的细胞外基质丢失；三是实验中建议设置正常卵巢上皮细胞作为对照，明确肿瘤特异性生物学特征。作为卵巢癌研究的成熟模型，Caov-3细胞为推动妇科恶性肿瘤基础研究与临床转化提供了不可替代的实验基础。