J1111单核细胞白血病细胞源自白血病患者，悬浮生长，具单核细胞表型与恶性增殖特性，可用于白血病机制研究、药物筛选及耐药性分析。

J1111单核细胞白血病细胞

一、细胞基本生物学特性

J1111单核细胞白血病细胞源自单核细胞白血病患者样本，是研究单核细胞白血病发病机制、药物研发的重要体外模型，因保留单核系白血病细胞的核心恶性表型与功能特征，在血液系统肿瘤基础研究与转化医学领域应用广泛。

形态上，该细胞呈圆形或不规则椭圆形，胞体中等大小，直径约 12-18μm，胞质丰富且呈淡蓝色（瑞氏染色），可见散在细小嗜天青颗粒，部分细胞胞质含少量空泡；细胞核多为不规则形，呈凹陷、扭曲或折叠状，核仁 1-2 个且较清晰，体外培养以悬浮生长为主，仅极少量细胞轻微贴壁，无接触抑制特性，细胞密度达 1×10⁶ cells/mL 以上时易形成松散细胞团。生长特性方面，其增殖活性较强，倍增时间约 32-40 小时，常规培养条件下可稳定传代 50 代以上，且能长期维持白血病细胞的恶性特征 —— 具备体外克隆形成能力，在软琼脂培养基中可形成清晰克隆集落，同时可通过单核细胞诱导因子（如 M-CSF）诱导向成熟单核细胞方向分化，为研究白血病细胞分化调控机制提供理想模型。

分子表型上，该细胞高表达单核细胞系特异性标志物，如 CD14、CD11b、CD68，同时表达白血病相关抗原 CD33、HLA-DR，低表达成熟粒细胞标志物 CD15；细胞内存在单核细胞白血病常见的分子异常，部分样本检测到与细胞增殖相关的基因突变，染色体核型呈亚二倍体，存在特定染色体数目异常（如染色体缺失或扩增），与临床单核细胞白血病患者的细胞分子特征高度吻合，为疾病特异性研究提供可靠实验依据。

二、体外培养关键条件

J1111 单核细胞白血病细胞的体外培养需精准调控环境与营养，以维持其悬浮生长特性与功能稳定性：培养基选择上，shou选 RPMI-1640 培养基，需添加 10%-15% 胎牛血清（FBS）提供生长必需的营养因子，可补充 1% 丙酮酸钠以维持细胞代谢活性，培养基 pH 值需严格控制在 7.2-7.4，渗透压维持在 280-300 mOsm/kg；培养环境需稳定在 37℃恒温、5% CO₂浓度及饱和湿度，CO₂浓度波动≤±0.3%，温度偏差超过 ±1℃会导致细胞活力下降，增殖速率减缓，甚至诱发部分细胞凋亡。

传代管理是培养核心：当细胞密度达到 8×10⁵-1.5×10⁶ cells/mL 时需及时传代，无需消化处理，直接取对数生长期细胞悬液，按 1:2-1:3 比例加入新鲜培养基即可；传代时需轻轻吹打细胞悬液，避免用力过猛导致细胞破裂，同时去除培养瓶底部少量贴壁细胞（减少杂质干扰）；培养基更换频率为每 2 天 1 次，更换时保留 1/4 旧培养基（维持细胞适应的微环境），加入 3/4 新鲜培养基。此外，细胞对血清质量极为敏感，需选用低内毒素（≤10 EU/mL）、批次间一致性高的 FBS，高内毒素或劣质血清会导致细胞形态异常、克隆形成能力下降 35% 以上，影响实验结果可靠性。

三、核心科研应用领域

依托与临床单核细胞白血病的高度相似性，J1111 单核细胞白血病细胞在科研领域具有显著价值：

四、质量控制与使用注意事项

合格的 J1111 单核细胞白血病细胞需通过严格质量检测：细胞活力≥90%（台盼蓝染色法检测，死细胞呈蓝色，活细胞无色透明）；无细菌、真菌、支原体污染（采用 PCR 法或培养法检测，结果均为阴性）；免疫表型符合 CD14⁺CD11b⁺CD33⁺HLA-DR⁺特征；软琼脂克隆形成率≥25%，增殖速率稳定（倍增时间 32-40 小时）；染色体核型与分子异常特征明确（提供检测报告）。

使用时需注意：传代次数控制在 50 代内，超过传代上限可能导致细胞分子表型改变、分化能力减弱；细胞冻存需使用含 10% DMSO、20% FBS 的 RPMI-1640 专用冻存液，采用梯度降温法（4℃ 30 分钟→-20℃ 2 小时→-80℃过夜→液氮长期保存），复苏时需在 37℃水浴中 1 分钟内快速融化，离心去除冻存液后接种至新鲜预热的培养基，静置 24 小时待细胞恢复活性后再开展实验；进行药物处理或分化诱导实验时，需确保细胞处于对数生长期，每组设置 3 个复孔，同时设置空白对照组与溶剂对照组，减少实验误差，保证结果的可靠性。