COC1人卵巢癌细胞

COC1人卵巢癌细胞源于一名64岁女性卵巢浆液性囊腺癌患者的肿瘤组织，是20世纪80年代成功分离建株的卵巢癌细胞系。作为卵巢癌研究的经典模型，其保留了临床卵巢腺癌的核心生物学特征，兼具稳定的增殖性能与明确的分子表型，为解析卵巢癌发病机制、筛选靶向药物及探索治疗策略提供了重要实验载体，在卵巢癌基础研究与临床转化中应用广泛。

COC1细胞的生物学特性以典型的卵巢腺癌细胞表型、稳定遗传特征及一定侵袭潜能为核心。细胞形态呈上皮样，多为多边形或短梭形，胞质丰富且边界清晰，细胞核大而圆，核仁明显，部分细胞呈现多核或核畸形现象，体外培养以贴壁生长为主，生长状态稳定时形成致密的细胞单层，边缘可见少量呈伪足状的侵袭性细胞。免疫表型鉴定显示，该细胞高表达卵巢癌特异性标志物CA125（糖类抗原125）、HE4（人附睾蛋白4）及上皮细胞标志物CK7（细胞角蛋白7），同时表达雌激素受体（ER）与孕激素受体（PR），与临床浆液性卵巢癌的分子表达谱高度契合。遗传学方面，COC1细胞存在TP53基因突变、BRCA1基因低表达等卵巢癌高频遗传变异，且具有染色体数目异常特征，为耐药机制及致病机理研究提供了天然模型。增殖性能上，其倍增周期约为48-60小时，成瘤性强，在裸鼠皮下移植成瘤率达100%，肿瘤组织病理形态与原发癌高度相似。

标准化的培养与保存流程是维持COC1细胞生物学特性稳定的关键。体外培养推荐使用DMEM培养基，添加10%胎牛血清以提供充足营养支持，培养环境需严格控制在37℃、5%二氧化碳及饱和湿度的恒温培养箱中。该细胞对培养条件适应性较强，在pH值7.2-7.4的环境中生长最佳，因贴壁能力较强，传代时需充分消化以获得单细胞悬液。当细胞融合度达到75%-85%时进行传代，传代前用PBS缓冲液轻柔冲洗细胞2次，加入细胞解离液孵育3-5分钟至细胞边缘收缩，加入含血清的培养基终止解离，吹打均匀后按1:3-1:4比例接种至新培养瓶。冻存时采用含10%DMSO、40%胎牛血清及50%培养基的专用冻存液，将细胞密度调整为1×10^7个/mL，经4℃（30分钟）、-20℃（2小时）、-80℃（过夜）梯度降温后转入液氮长期保存；复苏时在37℃水浴中快速解冻，离心去除DMSO后用新鲜培养基重悬接种，复苏成活率可达92%以上，且能稳定保留核心生物学特性。

COC1细胞的科研应用价值聚焦于卵巢癌发病机制、耐药研究及药物研发三大方向。在发病机制研究中，借助其TP53突变及BRCA1低表达特征，可深入探究抑癌基因失活介导的细胞恶性转化机制、ER/PR信号通路对肿瘤增殖的调控作用，为揭示卵巢癌的致病机理提供直接实验依据。在耐药研究领域，该细胞系可通过诱导建立耐药模型，解析卵巢癌对铂类药物耐药的分子机制，筛选逆转耐药的关键靶点及活性分子。在药物研发方面，COC1细胞是抗卵巢癌药物筛选的核心工具，尤其适用于评估针对激素受体阳性、TP53突变型卵巢癌的靶向药物疗效，可用于验证靶向ER/PR通路药物、PARP抑制剂等的体外活性，同时为新型药物递送系统的研发提供实验支撑。此外，COC1细胞还广泛应用于肿瘤侵袭转移机制研究、肿瘤微环境交互分析及基因功能验证，例如通过基因编辑技术调控BRCA1表达，观察其对肿瘤细胞敏感性的影响，为开发个性化治疗方案提供实验基础。其明确的分子表型与稳定的生物学性能，使其成为卵巢癌研究领域不ke或缺的重要实验材料。