L7712小鼠T细胞性白血病瘤株源自小鼠 T 细胞白血病，高表达 CD3/CD4/CD8 等 T 细胞标志物，致瘤稳定，可构建白血病模型，常用于白血病机制研究及抗肿瘤药物筛选。

L7712小鼠T细胞性白血病瘤株

L7712小鼠T细胞性白血病瘤株是从 BALB/c 近交系小鼠诱导产生的 T 细胞性白血病组织中分离、经体内多代传代纯化建立的稳定肿瘤株系，核心特征为典型 T 细胞白血病病理形态、特异性 T 细胞表面标志物表达及可控的体内增殖与浸润潜能，可在同源 BALB/c 小鼠体内高效构建标准化白血病模型，精准模拟临床 T 细胞性白血病的病理进程，是 T 细胞白血病发病机制研究、抗白血病药物体内评估及肿瘤免疫调控探索的重要工具，在白血病研究领域具有显著的应用价值。

从瘤株来源与病理特征来看，L7712 小鼠 T 细胞性白血病瘤株的建立为 T 细胞白血病研究提供了针对性模型 —— 科研人员通过化学诱导剂（如甲基胆蒽）处理 BALB/c 小鼠，诱导其产生 T 细胞性白血病，待小鼠出现典型白血病症状（如体重下降、外周血白细胞异常升高）后，经外周血涂片镜检、骨髓病理学检查及免疫分型确诊；随后在无菌条件下采集小鼠骨髓与外周血，利用密度梯度离心法分离纯化白血病细胞，将纯化后的瘤细胞接种于同源 BALB/c 小鼠腹腔，经过 “体内传代 - 筛选纯化" 过程（连续传代 7-9 代），最终获得形态均一、免疫表型稳定、致瘤率一致的 L7712 瘤株。该瘤株严格保留 T 细胞性白血病的核心病理特征：显微镜下瘤细胞呈淋巴母细胞样，细胞体积偏小、呈圆形或类圆形，胞质稀少且呈强嗜碱性，细胞核大而圆、染色质呈粗颗粒状，核仁隐约可见；免疫表型检测显示，瘤细胞高表达 T 细胞特异性标志物（CD3⁺比例达 90% 以上、CD4⁺CD8⁺双阳性比例约 65%），几乎不表达 B 细胞标志物（CD19、CD20 阳性率＜2%）与髓系标志物（CD11b、Gr-1 阳性率＜1%），明确其 T 淋巴细胞来源属性；核型分析为亚二倍体（染色体数目 37-38 条），含特征性染色体异常（如 6 号染色体短臂缺失），与临床人类 T 细胞急性淋巴细胞白血病（T-ALL）的部分遗传特征相符，为深入研究 T 细胞白血病的发病机制提供了生理相关模型。

在核心生物学特性方面，L7712 小鼠 T 细胞性白血病瘤株凭借 “模型可控性" 与 “临床关联性"，成为 T 细胞白血病研究的优质选择。其一，双模型构建能力与稳定致瘤性：L7712 瘤株可灵活构建两种白血病模型 —— 尾静脉注射模型（每只小鼠注射 8×10⁵个瘤细胞）：接种后 8-11 天，小鼠外周血白血病细胞比例突破 5%，15-22 天骨髓与脾脏的白血病细胞浸润率达 55% 以上，精准模拟临床白血病 “外周血扩散 - 骨髓侵犯 - 淋巴器官受累" 的病理过程；腹腔注射模型（每只小鼠注射 4×10⁵个瘤细胞）：接种后 11-13 天，小鼠腹腔可收集 2-2.5mL 含高活性瘤细胞的腹水，腹水中瘤细胞存活率超 96%，且腹水瘤细胞经尾静脉注射可成功构建播散模型，实现 “局部模型 - 全身模型" 的灵活转换。两种模型的致瘤率均为 100%，体内连续传代 30 次以上，瘤细胞的形态、免疫表型及致瘤周期无明显变化，实验重复性强。其二，明确的免疫原性与宿主免疫应答：L7712 瘤株具有中度免疫原性，可诱导宿主产生特异性抗肿瘤免疫反应 —— 接种后 11 天，小鼠脾脏中 CD8⁺细胞毒性 T 细胞比例从正常的 22%-26% 提升至 36%-41%，且这些 CD8⁺T 细胞对 L7712 瘤细胞的特异性杀伤率达 32% 以上；同时，瘤细胞可分泌免疫抑制因子（IL-10、TGF-β），维持瘤组织微环境的 “免疫激活 - 免疫抑制平衡"，与临床 T 细胞白血病患者的免疫微环境特征高度一致，为肿瘤免疫相关研究提供理想模型。其三，药物敏感性与耐药机制代表性：L7712 瘤株对临床常用抗白血病药物（如柔红mei素）表现出与临床患者相似的响应规律 —— 柔红mei素处理尾静脉注射模型后，小鼠外周血白血病细胞比例下降 42%-52%，生存期延长 35%-45%，IC50 值与临床用药浓度范围匹配；通过长期低剂量药物诱导，可成功构建耐药亚株，耐药亚株中多药耐药基因（MDR1、ABCB1）的表达量是亲本株的 3.5-4.5 倍，与临床耐药患者的分子机制相符，为白血病耐药机制研究及逆转耐药药物筛选提供关键模型支持。

在瘤株维护与模型构建细节上，L7712 小鼠 T 细胞性白血病瘤株的传代与模型建立需注重 “无菌操作" 与 “条件标准化"。瘤株维护优先采用腹腔传代（操作简便且能快速获取大量高活性瘤细胞）：选取腹腔接种后 11-13 天、腹水清亮的小鼠，在无菌超净台内抽取腹水，1200rpm 离心 6 分钟收集瘤细胞，用无菌生理盐水重悬并调整浓度至 4×10⁵个 /mL，每只 BALB/c 小鼠腹腔注射 0.2mL，传代间隔 11-15 天。传代过程中，每 6 代需检测瘤细胞的免疫表型（CD3、CD4、CD8 表达比例）与致瘤时间，确保无表型漂移。模型构建时，尾静脉注射需使用 31G 微量注射器，缓慢注入瘤细胞悬液（避免液体外漏引发局部肿瘤）；腹腔注射需避开小鼠肝脏区域，注射后轻揉腹部使瘤细胞均匀分布。所有模型需选用 6-8 周龄雌性 BALB/c 小鼠（体重 17-21g），实验前适应环境 1 周，接种后定期监测（外周血涂片检查、体重记录、生存期统计），保障实验数据的可靠性。

在科研与应用领域，L7712 小鼠 T 细胞性白血病瘤株的价值集中在 T 细胞白血病相关研究的关键场景。其一，白血病基础机制研究：该瘤株是解析 T 细胞白血病增殖、凋亡及信号通路的核心模型 —— 研究 JAK-STAT 信号通路（T-ALL 重要通路）时，L7712 瘤细胞中 JAK2、STAT3 的磷酸化水平显著高于正常 T 细胞，抑制 JAK2 后细胞增殖抑制率达 52% 以上，凋亡率提升 2.8 倍；研究白血病细胞浸润机制时，发现瘤细胞高表达趋化因子受体 CCR7，沉默 CCR7 后淋巴结浸润率从 55% 降至 23%，明确其在白血病淋巴转移中的关键作用。其二，抗白血病药物体内评价：L7712 瘤株是药物临床前体内筛选的重要工具 —— 体外筛选获得的活性化合物，可通过尾静脉注射模型验证对白血病细胞浸润的抑制效果，通过腹腔模型评估对瘤细胞增殖的影响；例如，新型 JAK2 抑制剂对 L7712 模型的抑瘤率达 58% 以上，且能降低骨髓白血病细胞浸润率，展现出良好的临床转化潜力。其三，肿瘤免疫相关研究：利用 L7712 瘤株的免疫原性特征，可开展肿瘤免疫相关研究 —— 构建瘤细胞疫苗免疫小鼠，能诱导产生特异性记忆 T 细胞，二次接种活瘤细胞后，小鼠生存期延长 55% 以上；评价 PD-L1 抗体时，药物可使瘤组织中 CD8⁺T 细胞浸润增加至 47%，白血病细胞清除率提升 38%，为肿瘤免疫相关药物研发提供有力的体内数据。其四，白血病诊断标志物验证：基于 L7712 荷瘤小鼠模型，可验证 T 细胞白血病诊断标志物 —— 检测荷瘤小鼠血清中可溶性 CD44、乳酸脱氢酶（LDH）浓度，发现其与白血病细胞负荷呈强正相关（r=0.87-0.92），且在临床 T-ALL 患者血清中也呈高表达，为白血病无创诊断标志物的临床转化提供体内验证支持。

综上，L7712 小鼠 T 细胞性白血病瘤株凭借其 T 细胞特异性表型、稳定的模型构建能力及高度的临床相关性，成为 T 细胞白血病研究领域的重要工具。其在基础机制、药物评价、免疫研究等领域的应用，不仅推动了 T 细胞白血病研究的标准化进程，更在抗白血病药物研发与临床转化中发挥关键作用，为解决 T 细胞白血病研究中 “模型针对性不足"“临床转化难度大" 等问题提供重要支撑，具有不可替代的科学价值与应用意义。