LA795小鼠肺腺癌瘤株源自 615 小鼠自发性肺腺癌，致瘤率高且转移潜能明确，可构建多种肺癌模型，常用于肺腺癌机制、抗肺癌药物筛选及微环境研究。

LA795小鼠肺腺癌瘤株

LA795小鼠肺腺癌瘤株是从 LA795 小鼠肺腺癌细胞系体内接种传代后，经筛选纯化获得的稳定肿瘤株系，核心特征为高度保留肺腺癌病理形态、明确的体内生长规律及稳定的转移潜能，可在同品系 615 小鼠体内高效构建原发灶与转移灶模型，精准模拟临床肺腺癌的体内进展过程，是肺腺癌体内机制研究、抗肺癌药物体内评价及肿瘤微环境互作探索的关键工具，在肺癌研究领域具有不可替代的 “体内实验载体" 地位。

从瘤株来源与病理特征来看，LA795 小鼠肺腺癌瘤株的建立实现了 “细胞系" 向 “体内瘤株" 的功能转化 —— 科研人员将体外培养的 LA795 肺腺癌细胞接种于 615 小鼠右侧腋窝皮下，待形成直径 1.5-2cm 的实体瘤后，无菌条件下剥离肿瘤组织，剔除包膜与坏死区域，选取生长旺盛的肿瘤边缘组zhi，剪成 1mm³ 左右的组织块；通过皮下接种方式将组织块传代至新的 615 小鼠体内，重复该 “体外细胞 - 体内肿瘤 - 组织块传代" 过程 5-6 代，最终获得形态均一、生长稳定且转移能力一致的 LA795 肺腺癌瘤株。该瘤株严格继承 LA795 细胞的肺腺癌病理特征，且体内表型更贴近临床：HE 染色显示，瘤组织呈腺管样或巢状排列，细胞异型性显著，核大深染、核仁清晰，部分区域可见黏液分泌，与人类肺腺癌中 “腺泡型" 病理亚型高度相似；免疫组化检测显示，瘤组织高表达肺腺癌特异性标志物（细胞角蛋白 7 CK7、甲状腺转录因子 - 1 TTF-1、表面活性物质相关蛋白 C SP-C），阳性表达率达 90% 以上，同时低表达肺鳞癌标志物（细胞角蛋白 10 CK10），与 LA795 细胞的免疫表型一致；组织病理学评分显示，该瘤株的分化程度为中低分化，与临床中晚期肺腺癌的分化特征相符，为体内研究肺腺癌病理进展提供了精准模型。

在核心生物学特性方面，LA795 小鼠肺腺癌瘤株凭借 “体内生长稳定性" 与 “转移可控性"，成为肺腺癌体内研究的理想选择。其一，稳定的体内生长规律与致瘤性：LA795 瘤株在 615 小鼠中的致瘤率达 100%，且生长曲线高度一致 —— 皮下接种 1mm³ 组织块后，3-5 天进入潜伏期，7 天左右可触及直径 0.3-0.5cm 的肿瘤，随后进入快速生长期，平均每日肿瘤体积增长 10%-15%，21 天左右肿瘤直径可达 1.8-2.2cm，重量约 1.5-2g；肿瘤生长过程中极少出现自发性坏死（坏死率＜5%），且不同批次接种的肿瘤生长速率差异＜10%，远优于直接接种细胞的模型稳定性；同时，瘤株经体内连续传代 20 次以上，仍保持稳定的病理形态与生长速率，无明显基因型漂移，确保了长期实验的重复性。其二，明确的转移路径与器官倾向性：LA795 瘤株的转移特性与临床肺腺癌高度契合 —— 皮下接种后，肿瘤主要通过淋巴道与血行途径转移，优先转移至肺部（转移率 85% 以上），其次为纵隔淋巴结（转移率 65%）、肝脏（转移率 25%），极少转移至脑、肾等器官，形成 “肺转移为主、区域淋巴结转移为辅" 的转移模式；解剖观察显示，肺转移结节多分布于肺周边区域，直径 0.1-0.3cm，呈圆形或类圆形，HE 染色可见典型腺癌细胞形态；通过荧光素酶标记瘤株后，可利用活体成像技术实时追踪转移过程，发现接种后 14 天即可在肺部检测到微弱荧光信号，21 天荧光信号显著增强，转移进程清晰可控，为研究肺腺癌转移的 “定植 - 增殖" 关键阶段提供了动态模型。其三，与宿主微环境的互作能力：LA795 瘤株可与 615 小鼠的肿瘤微环境形成紧密互作，模拟临床肺腺癌的微环境特征 —— 瘤组织内部可见丰富的肿瘤相关血管（CD31 阳性血管密度达 20-30 条 /mm²），同时存在大量肿瘤相关巨噬细胞（CD68 阳性细胞占比 15%-20%）与调节性 T 细胞（Foxp3 阳性细胞占 CD4⁺T 细胞的 18%-22%）；这些免疫抑制细胞可分泌 TGF-β、IL-10 等细胞因子，抑制抗肿瘤免疫反应，使瘤组织处于免疫抑制状态，与临床肺腺癌的微环境免疫特征一致，为肿瘤免疫相关药物的体内评价提供了生理相关模型。

在瘤株维护与模型构建细节上，LA795 小鼠肺腺癌瘤株的传代与模型建立需注重 “无菌操作" 与 “条件标准化"。瘤株体内传代时，选择生长旺盛、无坏死的肿瘤（接种后 21 天），在无菌超净台内剥离肿瘤组织，用生理盐水冲洗 3 次后，剪成 1mm³ 的组织块，采用无菌接种工具将组织块接种于 615 小鼠右侧腋窝皮下（每只小鼠接种 1 块），传代间隔 21-25 天；传代过程中需严格控制污染（微生物污染率＜1%），同时定期检测瘤株的病理形态与转移能力，确保无退化。模型构建方面，可根据研究目的选择不同接种方式：皮下接种适用于评价药物对原发灶的抑制效果，操作简便且便于测量肿瘤体积；肺内原位接种（通过开胸手术将组织块植入肺叶）适用于研究肺腺癌原发灶的生长机制与微环境互作，模型更贴近临床原位癌；尾静脉注射瘤细胞悬液（将瘤组织酶解为单细胞）适用于快速构建肺转移模型，21 天左右肺转移率即可达 90% 以上；所有模型均需使用 6-8 周龄雌性 615 小鼠（体重 18-22g），且实验前需适应环境 1 周，以减少个体差异对实验结果的影响。

在科研与应用领域，LA795 小鼠肺腺癌瘤株的价值集中在肺腺癌体内研究的关键场景。其一，肺腺癌转移机制体内研究：利用 LA795 瘤株的稳定转移特性，可深入探索转移相关机制 —— 例如，通过对比原发灶与肺转移灶的基因表达差异，发现转移灶中 MMP-9、VEGF-C 的表达量是原发灶的 2-3 倍，敲降 MMP-9 后肺转移率从 85% 降至 40%，明确其在转移中的关键作用；同时，利用活体成像技术观察瘤细胞在肺部的定植过程，发现瘤细胞与肺血管内皮细胞的黏附依赖于整合素 αvβ3 与纤连蛋白的结合，为开发抗转移靶向药物提供了新靶点。其二，抗肺腺癌药物体内评价：LA795 瘤株是药物临床前体内评价的核心模型 —— 评价针对肿瘤细胞增殖的药物时，皮下接种瘤株后给予药物，通过测量肿瘤体积计算抑瘤率，同时解剖观察肺转移结节数量，综合评估药物对原发灶与转移灶的抑制效果；评价靶向药物时，可观察到药物不仅能抑制肿瘤生长（抑瘤率 55%-60%），还能减少肺转移结节数量（减少 40% 以上），与临床响应趋势一致；评价肿瘤免疫相关药物时，相关药物处理后，瘤组织内 CD8⁺杀伤性 T 细胞浸润增加（从 10% 升至 25%），肿瘤生长抑制率达 45%-50%，为肿瘤免疫相关疗法的临床转化提供数据支持。其三，肿瘤微环境调控研究：LA795 瘤株的微环境特征为研究微环境调控机制提供了平台 —— 例如，通过注射巨噬细胞清除剂（如氯膦酸盐脂质体），可减少瘤组织内肿瘤相关巨噬细胞数量，使肿瘤生长速率下降 30%，同时增强针对肿瘤细胞药物的敏感性；研究成纤维细胞与瘤细胞的互作时，发现敲降成纤维细胞分泌的 IL-6，可逆转瘤细胞的药物耐药，为联合靶向微环境的疗法提供实验依据。其四，诊断与预后标志物体内验证：基于 LA795 瘤株的荷瘤小鼠模型，可验证肺癌诊断与预后标志物 —— 例如，检测荷瘤小鼠血清中 CEA、CYFRA21-1 的浓度，发现其与肿瘤体积呈正相关（r=0.85），且在肺转移发生后显著升高，与临床患者血清标志物变化趋势一致，为标志物的临床应用提供体内验证数据。

综上，LA795 小鼠肺腺癌瘤株凭借其稳定的体内生长特性、贴近临床的病理与转移特征，成为肺腺癌体内研究的核心工具。其在转移机制、药物评价、微环境研究等领域的应用，不仅推动了肺腺癌基础研究的深入，更在抗肺癌药物研发与临床转化中发挥着关键作用，为解决肺腺癌体内研究的 “模型稳定性" 与 “临床相关性" 问题提供了重要支撑，具有不可替代的科学价值与应用意义。