ST2小鼠间充质干细胞源自小鼠骨髓，呈贴壁生长，具成骨 / 成脂多向分化潜能与免疫调节功能，常用于干细胞分化机制、炎症疾病及骨修复研究。

ST2小鼠间充质干细胞

ST2小鼠间充质干细胞作为源自小鼠骨髓的经典间充质干细胞系，因能稳定保留间充质干细胞的多向分化潜能与免疫调节核心功能，同时具备易培养、增殖稳定的特性，成为干细胞生物学研究、炎症性疾病机制解析及组织修复策略开发的关键工具细胞。该细胞系从 C57BL/6 小鼠骨髓中分离纯化获得，经长期传代驯化与功能验证，不仅保留了原代骨髓间充质干细胞 “贴壁生长、可塑性强" 的基础优势，还通过克隆筛选优化，显著提升了分化方向的可控性与免疫调节效应的稳定性，被全球科研机构广泛用于干细胞分化机制研究、免疫相关疾病模型构建及骨 / 脂肪组织再生实验。

从生物学特性来看，ST2 小鼠间充质干细胞呈现典型的贴壁生长模式，显微镜下以长梭形或纺锤形为主，胞体舒展，排列呈 “漩涡状" 或 “束状"（模拟体内骨髓间充质干细胞的生长形态），无明显细胞聚集或形态异常，细胞间连接松散（区别于上皮细胞的紧密排列特征）。胞质丰富呈淡嗜酸性，可见少量脂滴前体（成脂分化潜能的结构基础）与细小颗粒（参与细胞因子分泌的细胞器），细胞核呈长椭圆形，多位于细胞中央或偏向一侧，核仁不明显（1 个为主），染色质呈细颗粒状均匀分布，核质比约为 1:4（符合间充质干细胞的低核质比特征，显著低于肿瘤细胞），增殖活性稳定（倍增时间约 48-72 小时，传代 60 代后仍保持一致的生长曲线与梭形形态，无明显衰老或表型漂移）。其核心生物学优势在于多向分化潜能与强效免疫调节功能：通过诱导分化实验验证，该细胞在特定诱导条件下可高效分化为成骨细胞（碱性磷酸酶活性升高、矿化结节形成）、成脂细胞（脂滴堆积、脂联素表达上调）及成软骨细胞（Ⅱ 型胶原蛋白表达），分化效率可达 80% 以上；免疫表型层面，流式细胞术检测显示其高表达间充质干细胞特异性标志物 CD29、CD44、Sca-1（阳性率均＞95%），不表达造血细胞标志物 CD45、CD34（阴性率＞98%），符合国际间充质干细胞鉴定标准；功能上，可通过分泌 IL-10、TGF-β 等抗炎细胞因子，抑制 T 细胞增殖与巨噬细胞活化，显著缓解炎症反应，为免疫相关疾病研究提供理想模型。

在细胞培养操作层面，ST2 小鼠间充质干细胞的核心要求是维持多向分化潜能与免疫调节功能稳定性，需精准模拟骨髓微环境的生长条件。适宜环境为 37℃、5% CO₂的恒温培养箱，培养基优先选用含 10% 胎牛血清的 α-MEM 培养基（α-MEM 含高浓度氨基酸与维生素，可更好维持干细胞的自我更新能力与分化潜能），需额外添加 1ng/mL 碱性成纤维细胞生长因子（bFGF，促进细胞增殖并抑制过早分化）；血清需选择低内毒素胎牛血清（内毒素含量＜5EU/mL），避免内毒素刺激导致细胞活化（如炎症因子异常分泌、分化方向偏移），影响功能实验结果；此外，需严格控制培养基 pH 值（7.2-7.4）与渗透压（280-320mOsm/kg），避免环境波动导致细胞贴壁能力下降或功能丢失。日常培养中，需每 2-3 天更换一次新鲜培养基（细胞代谢速率适中，及时补充 bFGF 可维持稳定增殖），更换时沿培养瓶壁缓慢加入，避免冲击细胞层导致形态改变；传代时机为细胞融合度达到 70%-80%（避免融合度过高导致细胞接触抑制，影响分化潜能），操作步骤需注意：先用 37℃预热的 PBS 清洗细胞 2 次（去除残留血清与代谢废物，减少对细胞状态的干扰），加入细胞消化液（需控制消化时间在 3-5 分钟，因细胞贴壁较牢固），37℃孵育期间定期观察，待细胞间隙增大、胞体收缩为短梭形后立即终止，加入含血清的培养基中和消化液，轻轻吹打（力度需轻柔，避免剧烈吹打导致细胞破碎）至单细胞悬液，按 1:3-1:4 比例接种至新培养瓶，确保接种密度为 1×10^4 - 2×10^4 cells/cm²（密度过低易导致细胞生长缓慢且分化潜能下降，过高则易出现细胞堆积，影响功能表达）。

在科研应用领域，ST2 小鼠间充质干细胞的价值贯穿干细胞研究与疾病模型构建多个方向。在干细胞分化机制研究领域，该细胞是探究间充质干细胞定向分化调控的理想模型：例如，通过调控 Wnt/β-catenin 信号通路（成骨分化关键通路）或 PPARγ 信号通路（成脂分化关键通路），观察细胞分化标志物表达变化，揭示信号通路对分化方向的调控机制；或通过基因编辑技术敲除 / 过表达分化相关基因（如 Runx2、C/EBPα），明确基因在成骨 / 成脂分化中的功能，为干细胞定向诱导策略开发提供理论支撑。在炎症性疾病研究领域，ST2 细胞的免疫调节功能可用于构建炎症模型（如与 LPS 活化的巨噬细胞共培养），探究其对炎症因子（如 IL-6、TNF-α）释放的抑制作用，或通过动物实验（如结肠炎、关节炎模型）评估细胞移植后的抗炎效果，为炎症性疾病的细胞治疗提供实验基础。在组织修复研究领域，该细胞可用于骨修复机制探究（如与支架材料复合构建骨组织工程模型，检测矿化能力与骨形成效率）、脂肪组织再生研究（如诱导分化为成脂细胞后移植，观察脂肪组织形成情况），同时可用于筛选促进组织修复的小分子药物（如检测药物对细胞分化效率的提升作用），为骨缺损、脂肪wei缩等疾病的治疗提供新方向。此外，在药物安全性评价领域，ST2 细胞可用于检测药物对干细胞活性与分化潜能的影响（如通过 CCK-8 法检测细胞活力，通过成骨 / 成脂分化实验评估药物对干细胞功能的干扰），为干细胞治疗相关药物的临床前安全性评价提供可靠数据。

综上所述，ST2 小鼠间充质干细胞凭借其稳定的多向分化潜能、强效免疫调节功能及可靠的生物学特性，成为连接干细胞基础研究与疾病治疗应用的关键工具，为推动干细胞生物学发展、炎症性疾病机制解析及组织修复策略开发提供了坚实的细胞模型支撑。