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P3X63-Ag8.653小鼠骨髓瘤细胞
产品简介:

P3X63-Ag8.653小鼠骨髓瘤细胞源自 BALB/c 小鼠,悬浮生长,具 HGPRT 缺陷,可高效融合 B 细胞,是单克隆抗体制备、抗体研发的重要工具细胞。

产品型号:

更新时间:2025-10-28

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产品介绍

P3X63-Ag8.653小鼠骨髓瘤细胞

P3X63-Ag8.653小鼠骨髓瘤细胞是 P3X63Ag8 细胞的克隆衍生株,源自 BALB/c 小鼠骨髓瘤,核心特性为缺乏次黄piao呤磷酸核糖基转移酶(HGPRT)且无免疫球蛋白重链与轻链基因表达,具备与 B 淋巴细胞高效融合形成杂交瘤的能力。作为单克隆抗体制备的优质工具细胞,其融合效率与抗体分泌稳定性更优,广泛应用于免疫学研究、抗体药物研发及医学诊断领域。

一、核心生物学特性

(一)来源与细胞本质

P3X63-Ag8.653 细胞由 P3X63Ag8 细胞经克隆筛选获得,保留骨髓瘤细胞的恶性增殖特征,同时通过基因筛选剔除免疫球蛋白编码基因。因 HGPRT 基因缺陷,无法在次黄piao呤 - 氨基蝶呤 - 胸腺嘧啶(HAT)培养基中自主合成嘌呤与嘧啶,仅能依赖融合的 B 细胞提供 HGPRT 基因存活,这一特性为杂交瘤细胞的特异性筛选提供关键依据,有效避免未融合细胞干扰。

(二)形态与增殖特征

体外培养时呈典型悬浮生长状态,细胞形态为圆形或椭圆形,大小均一(直径约 12-16μm),无贴壁能力(仅少数细胞因培养条件波动短暂附着瓶壁,无增殖活性);胞质透明,含少量细小颗粒,细胞核大而圆,位于细胞中央,核仁清晰(1-2 个),染色质呈疏松网状,分裂象频繁(符合恶性浆细胞增殖特征)。

增殖能力强劲,倍增时间约 16-22 小时,传代 80 代以内可维持稳定增殖活性;细胞密度在 1×10⁵-1.5×10⁶ cells/mL 时增殖状态最佳,密度超过 2.5×10⁶ cells/mL 易因营养竞争引发凋亡,密度低于 5×10⁴ cells/mL 会导致增殖停滞,需通过定期传代维持最佳密度范围。

(三)分子表型与功能特征

P3X63-Ag8.653 细胞的分子特性高度适配杂交瘤技术需求,较亲本株优势显著:

  • 基因缺陷特性:HGPRT 基因缺陷稳定,同时缺失免疫球蛋白重链(IgH)与轻链(IgL)基因,不自主分泌抗体,彻di避免融合后杂交瘤抗体的杂带干扰,简化抗体检测流程;

  • 免疫相关分子:表达 MHCⅡ 类分子(如 I-Ab)、共刺激分子 CD40 及黏附分子 ICAM-1,增强与 B 细胞的相互作用,融合效率较亲本株提升 30%-50%,可达 10⁻³-10⁻²;

  • 代谢适应性:对 HAT 培养基敏感性更高,未融合细胞在 HAT 中 2-3 天即可wan全凋亡,缩短杂交瘤筛选周期,减少阴性孔对实验资源的占用。

二、体外培养与操作流程

(一)基础培养体系

P3X63-Ag8.653 细胞对培养条件要求精准,需采用优化的悬浮细胞培养体系:

  • 培养基选择:优先使RPMI-1640 培养基(含 25mM HEPES 缓冲液、1mM 丙酮酸钠、0.1mM 非必需氨基酸),添加 12%-15% 胎牛血清(需通过预实验筛选支持高融合效率的批次,血清白蛋白含量需≥35g/L)及 1% 抗菌试剂(预防细菌污染);

  • 培养环境:温度 37℃±0.5℃、5% CO₂±0.2%、湿度 95%±2%,pH 维持在 7.2-7.4,渗透压 290-310mOsm/kg;使用透气盖培养瓶,确保气体充分交换,避免细胞因缺氧出现形态异常(如胞质颗粒增多、细胞核固缩)。

(二)传代与密度控制

传代时机:当细胞密度达 1×10⁶-1.2×10⁶ cells/mL 时需及时传代(通常每 18-24 小时传代一次),避免密度过高引发细胞凋亡;传代比例根据实验需求调整,常规实验按 1:6-1:12 稀释(如取 1mL 细胞悬液加入 5-11mL 新鲜培养基),大规模融合实验前按 1:3 稀释以快速扩增细胞。

传代步骤:

  1. 轻柔颠倒培养瓶 5-8 次,使悬浮细胞均匀分布(避免细胞沉淀导致取样偏差);

  1. 取定量细胞悬液加入新鲜培养基,用移液器缓慢吹打 3-4 次(避免产生气泡,气泡会破坏细胞膜完整性);

  1. 将稀释后的细胞悬液转移至新培养瓶,置于培养箱中培养;无需消化处理,直接稀释即可维持细胞活性。

密度监测:每日采用台盼蓝染色法计数细胞密度与活力,活力需维持在 95% 以上,低于 90% 需更换早期传代细胞(如第 10-20 代冻存细胞),确保细胞处于最佳功能状态。

(三)冻存与复苏要点

冻存细胞需选择对数生长期、活力≥98% 的细胞,确保复苏后功能稳定:

  • 冻存液配置:含 10% 二甲基亚砜(DMSO,细胞级,纯度≥99.5%)、20% 胎牛血清、70% RPMI-1640 培养基,配置过程需在冰浴中进行,DMSO 缓慢滴加并不断轻柔混匀,避免温度骤降损伤细胞;

  • 冻存步骤:离心收集细胞(1000×g,5 分钟),弃去上清,用预冷的冻存液重悬细胞,调整浓度为 8×10⁶-1×10⁷ cells/mL,分装至冻存管;采用程序降温法冻存:4℃放置 30 分钟→-20℃放置 1 小时→-80℃放置 12 小时→转入液氮长期保存;

  • 复苏步骤:从液氮取出冻存管,立即放入 37℃水浴中快速解冻(40-60 秒内wan全融化),避免 DMSO 长时间接触细胞产生毒性;将解冻后的细胞悬液缓慢加入 10 倍体积预热的新鲜培养基,轻轻混匀,离心(1000×g,5 分钟)去除 DMSO,用新鲜培养基重悬后接种至培养瓶。

复苏存活率可达 90% 以上,复苏后 12 小时观察细胞状态,若出现少量细胞碎片,无需特殊处理,24 小时后细胞可恢复正常增殖;若碎片比例超过 10%,需离心更换培养基,补充 2% 额外血清促进细胞恢复。

三、主要研究应用场景

(一)高特异性单克隆抗体制备

P3X63-Ag8.653 细胞是杂交瘤技术的优选融合伴侣,尤其适用于高特异性抗体制备:

  1. 免疫与细胞制备:用高纯度目标抗原(如重组蛋白、小分子化合物偶联载体)免疫 BALB/c 小鼠,末次免疫后 3 天取脾脏,研磨获得单细胞悬液,通过淋巴细胞分离液纯化 B 细胞;

  1. 细胞融合:将纯化的 B 细胞与对数生长期的 P3X63-Ag8.653 细胞按 8:1-12:1 比例混合,加入 50% 聚乙二醇(PEG,分子量 1500)诱导融合,融合时间控制在 90-120 秒,降低细胞毒性;

  1. 筛选与克隆:融合后将细胞悬液接种至 96 孔板,用 HAT 培养基培养,5-7 天更换一次培养基,10-14 天通过 ELISA、Western blot 筛选特异性抗体阳性孔;对阳性孔采用有限稀释法克隆化 3 次,获得单克隆杂交瘤细胞株,可稳定分泌抗体 6 个月以上。

(二)抗体工程与改造研究

依托其无内源性抗体表达的特性,可用于基因工程抗体的构建与筛选:

  • 重组抗体表达:将噬菌体抗体库筛选获得的抗体基因(如 scFv、Fab 片段)克隆至真核表达载体,转染 P3X63-Ag8.653 细胞,通过抗性筛选与抗体检测,获得高效表达重组抗体的细胞株,表达量可达 5-10μg/mL/ 天;

  • 双特异性抗体开发:构建双特异性抗体基因(如 CD3×HER2 双抗),转染 P3X63-Ag8.653 细胞,优化培养条件(如添加 1mM 丁酸钠)提升抗体表达量,通过流式细胞术验证双抗的双靶点结合能力,为肿瘤免yi治疗提供候选药物。

(三)免疫机制与信号通路研究

利用其免疫相关分子表达特性,可开展 B 细胞活化与抗体分泌机制研究:

  • B 细胞共刺激信号研究:将 P3X63-Ag8.653 细胞与 B 细胞共培养,添加不同共刺激分子抗体(如抗 CD40L、抗 CD86),检测细胞因子(IL-6、IL-10)分泌与 B 细胞增殖情况,解析共刺激信号对 B 细胞活化的调控作用;

  • 抗体分泌调控机制:通过 CRISPR/Cas9 技术敲除杂交瘤细胞中的 Blimp-1、XBP-1 等抗体分泌相关基因,观察抗体产量变化,结合 RNA 测序分析差异表达基因,阐明抗体分泌的分子调控网络。

(四)诊断试剂与药物研发

在医学诊断与抗体药物研发中发挥关键作用:

  • 诊断抗体制备:针对传染病标志物(如 HBsAg、HCV E2 蛋白)、肿瘤标志物(如 CEA、CA19-9)制备单克隆抗体,用于构建 ELISA 试剂盒、免疫层析试纸条,因无内源性抗体干扰,诊断灵敏度较传统杂交瘤技术提升 20%-30%;

  • 治疗性抗体评估:将候选治疗性抗体(如抗 PD-L1 抗体)与 P3X63-Ag8.653 细胞构建的杂交瘤细胞共培养,通过细胞毒性实验、抗体依赖性细胞介导的细胞毒性(ADCC)检测,评估抗体的生物学活性,为临床前研究提供数据支持。

四、实验应用注意事项

  1. 污染防控与细胞纯度:细胞为悬浮生长,易受支原体、病毒污染,需每传代 2-3 次通过 PCR 法检测支原体,每季度检测病毒(如小鼠微小病毒、仙台病毒);培养过程中若发现培养基出现异常浑浊、颜色变化(如呈橘红色、黑色),需立即丢弃污染细胞,对培养环境用 75% 乙醇擦拭并紫外线照射 60 分钟,避免交叉污染;严禁与其他悬浮细胞(如淋巴细胞)共用培养试剂,确保细胞纯度。

  1. 融合实验优化:融合前 24 小时需更换 P3X63-Ag8.653 细胞的新鲜培养基,提升细胞活力;PEG 需在 37℃水浴中预热至与细胞温度一致,避免温度差异导致细胞损伤;融合后接种 96 孔板时,细胞密度需控制在 2×10³-5×10³ cells / 孔,密度过高易出现多克隆混杂,过低则阳性率降低;HAT 培养基需在融合后 24 小时内更换一次,去除未融合细胞碎片,减少毒性物质积累。

  1. 培养基与血清选择:培养基需添加非必需氨基酸与丙酮酸钠,满足细胞高代谢需求,缺乏这些成分会导致细胞增殖速率下降 30%-50%;血清需通过预实验筛选,选择支持高融合效率的批次,可通过对比不同血清批次的细胞融合率(需≥5×10⁻³)与杂交瘤克隆形成数确定最佳血清;血清解冻后需分装保存,避免反复冻融破坏生长因子活性。

  1. 细胞传代与保种策略:长期传代(超过 60 代)可能导致细胞 HGPRT 缺陷稳定性下降,需每 10 代验证细胞的 HAT 敏感性(接种 HAT 培养基 3 天,细胞凋亡率需≥99%);长期保种需采用 “梯度传代冻存法",即每 5 代冻存一次,每次冻存 3-5 支,标注代次、冻存日期与操作人员;实验优先使用传代 20-50 代的细胞,确保融合效率与抗体分泌稳定性。


 

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