ZR751人乳腺导管癌细胞源于人类乳腺导管癌组织，具无限增殖、侵袭特性，易培养且分子特征明确，是研究乳腺癌机制、筛选抗癌药物的重要模型。

ZR751人乳腺导管癌细胞

ZR751人乳腺导管癌细胞是从人类乳腺导管癌患者手术切除的肿瘤组织中分离培养得到的恶性细胞群体，因能稳定复现体内乳腺导管癌的病理特征、分子表达模式及恶性生物学行为，且体外培养易操作、增殖状态稳定，成为探究乳腺导管癌发病机制、筛选抗癌药物及优化治疗策略的核心模型细胞，在肿瘤学、分子生物学及药理学研究中应用广泛，对乳腺导管癌临床诊疗水平的提升具有重要参考意义。

从细胞来源与培养特性来看，这类人乳腺导管癌细胞的原始样本取自经病理确诊为乳腺导管癌患者的肿瘤组织，需在无菌环境下快速处理：先剔除肿瘤组织中的坏死部分、正常乳腺上皮组织及脂肪组织，将活性肿瘤组zhi剪切成 1-2mm³ 的小块，采用胶原酶分步消化，破坏肿瘤间质结构与细胞间连接，释放出单个癌细胞；接着用 200 目细胞筛过滤去除未消化的组织碎片，收集细胞悬液后以 800-1000rpm 的转速低速离心纯化，借助癌细胞与正常细胞贴壁速度的差异（癌细胞贴壁较慢且形态不规则），结合含特定生长因子的选择性培养基培养，最终可获得纯度超 90% 的目标细胞。原代培养的细胞在 24-48 小时内开始贴壁，初期以多边形为主，部分呈短梭形，随着培养时间推移，逐渐形成边界模糊的不规则细胞群落；传代培养时，细胞可稳定传代且增殖能力不受明显制约，目前已建立永生化细胞系，其遗传背景清晰，保留了乳腺导管癌的核心分子特征（如部分细胞表达 HER-2、雌激素受体等），传代过程中分子表型稳定，大幅降低了实验重复性成本，成为标准化的研究工具。

在形态与生物学功能方面，这类人乳腺导管癌细胞展现出典型的乳腺导管癌恶性细胞特征与功能特异性。在显微镜下观察，细胞体积较大，核质比明显高于正常乳腺上皮细胞，细胞核多为圆形或椭圆形，核仁显著且数量增多，染色质分布不均，常出现异常核分裂象；细胞质内线粒体数量增多但功能紊乱，为癌细胞的无限增殖提供能量，部分细胞的细胞质中还能观察到黏液样物质分泌，与乳腺导管癌的病理特征相符。生物学功能上，其核心恶性特征主要体现在三方面：一是无限增殖能力，在适宜的培养条件下，细胞倍增时间约为 36-48 小时，能够突破正常细胞的增殖周期限制，持续分裂并形成密集的细胞克隆，适合开展细胞增殖调控机制相关研究；二是侵袭转移潜能，通过 Transwell 侵袭实验可发现，细胞能分泌基质金属蛋白酶（如 MMP-9、MMP-2）降解人工基底膜，向膜下迁移，模拟体内乳腺导管癌细胞突破导管壁、侵袭周围组织的过程，为研究转移机制提供了理想模型；三是激素敏感性，部分细胞保留雌激素受体（ER）或孕激素受体（PR）的表达，对雌激素、孕激素刺激有响应，可用于探究激素依赖性乳腺导管癌的发病机制及抗激素治疗药物的筛选。培养条件上，这类细胞适合在含 10%-15% 胎牛血清的 RPMI-1640 培养基中生长，添加适量胰岛素（5-10μg/mL）可增强细胞活性，在 37℃、5% CO₂饱和湿度的培养箱内培养，培养过程中需定期检测细胞活力与污染情况，确保其恶性特征与分子表型稳定。

在病理关联与机制研究方面，这类人乳腺导管癌细胞是解析乳腺导管癌发病机制与病理进程的重要工具。从分子分型角度，部分细胞株属于 Luminal 型（ER/PR 阳性），部分可能为 HER-2 过表达型或三阴性，不同分子分型的细胞在增殖速度、侵袭能力及药物敏感性上存在差异，可用于研究不同分型乳腺导管癌的发病差异 —— 例如 ER 阳性细胞对抗雌激素药物敏感，可用于探索激素信号通路在癌症发生中的作用；三阴性细胞则对特定治疗药物反应更明显，适合开展药物耐药机制研究。在病理进程研究中，通过体外模拟乳腺导管癌发展的关键阶段（如从导管原位癌向浸润性导管癌转化），能够观察到细胞分子特征的变化：如 E - 钙粘蛋白表达下调导致细胞间黏附力下降，β- 连环蛋白核转位激活增殖相关基因（如 c-Myc），这些变化与临床乳腺导管癌的进展过程高度一致，为揭示癌症恶性转化机制提供了实验依据。此外，这类细胞还可用于研究环境因素（如长期雌激素暴露、肥胖相关因子）对乳腺导管癌发生的影响，通过在体外添加相关因子，观察细胞增殖、凋亡及基因表达的变化，明确危险因素的作用靶点。

在多领域研究应用方面，这类人乳腺导管癌细胞是生物医学研究中的 “多功能平台"。在肿瘤机制研究中，通过基因测序、蛋白质组学分析等技术，可筛选出乳腺导管癌的关键驱动基因（如 BRCA1/2 突变、PIK3CA 突变），利用 CRISPR-Cas9 技术敲除或过表达目标基因，观察细胞增殖、侵袭能力的变化，验证基因功能；同时，还能研究信号通路（如 PI3K-AKT-mTOR 通路、MAPK 通路）在癌症中的异常激活机制，为开发靶向药物提供理论基础。在抗癌药物研发中，这类细胞是筛选各类抗癌药物的核心模型 —— 通过 MTT 法检测药物对细胞活力的抑制率，利用流式细胞术分析药物诱导的细胞凋亡率，结合 Western blot 检测凋亡相关蛋白（如 Caspase-3、Bax）的表达，评估药物的抗肿瘤效果；例如在靶向治疗研究中，针对 HER-2 过表达的细胞，可测试相应靶点抑制剂的疗效，为临床用药提供参考。在临床诊断技术开发中，基于这类细胞的特异性标志物（如 CA15-3、CEA），可研发乳腺导管癌诊断试剂盒，通过检测患者血液或体液中的标志物水平，实现癌症的早期筛查；同时，利用细胞构建的药敏检测模型，可预测患者对不同治疗药物的敏感性，为临床个性化治疗方案的制定提供依据。

从科研价值与学科发展来看，这类人乳腺导管癌细胞极大推动了肿瘤学与乳腺病学领域的研究进步，为乳腺导管癌诊疗技术的创新提供了重要支撑。在肿瘤机制领域，基于这类细胞的研究成果，明确了多个乳腺导管癌驱动基因与信号通路，如 PI3K-AKT-mTOR 通路异常激活与癌症增殖的关联，为靶向药物研发指明了方向；目前，针对相关靶点的抑制剂已在部分乳腺导管癌治疗中开展临床试验，为患者带来了新的治疗选择。在药物研发领域，这类细胞模型加速了抗癌药物的临床转化，多种常用抗癌药物均通过该类细胞模型的前期筛选与验证，显著提高了乳腺导管癌患者的生存率。在临床诊断领域，基于细胞标志物的诊断技术，如 CA15-3 联合 CEA 检测，大幅提升了乳腺导管癌的早期诊断率，降低了漏诊风险。此外，随着类器官技术与单细胞测序技术的发展，将这类细胞与正常乳腺上皮细胞、免疫细胞共培养构建 “乳腺导管癌类器官"，能更真实地模拟体内肿瘤微环境，结合单细胞测序分析癌细胞异质性，为乳腺导管癌精准治疗与耐药机制研究提供了新的技术平台。

综上所述，这类人乳腺导管癌细胞凭借恶性特征典型、分子表型稳定、临床相关性强等优势，成为乳腺导管癌研究中的 “核心模型细胞"。其在机制解析、药物研发、临床诊断技术开发中的应用，既推动了基础科研的突破，又为临床实践与医疗技术革新提供了重要支持，对乳腺导管癌学科发展与女性健康保障具有不可替代的科学价值。